تاثیر عصاره هیدروالکلی ترب سیاه بر کلیه و عملکرد آن در موش‌های آزمایشگاهی نژاد Balb/c

الموضوعات : فصلنامه زیست شناسی جانوری

مریم کریمی دهکردی ¹ (گروه دامپزشکی، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرکرد، ایران)
ایمان جعفری ² (گروه دامپزشکی، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرکرد، ایران)
گوزل رهبر ³ (گروه داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی مازندران، ساری، ایران)
منیره شفاهی ⁴ (گروه زیست‌شناسی، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران)
فروغ محمدی ⁵ (گروه دامپزشکی، واحد کرمانشاه، دانشگاه آزاد اسلامی، کرمانشاه، ایران)

تاريخ الإرسال : 15 الثلاثاء , ذو القعدة, 1443 تاريخ التأكيد : 28 السبت , ذو القعدة, 1444 تاريخ الإصدار : 10 الثلاثاء , شعبان, 1445

الکلمات المفتاحية: کلیه, موش, عصاره هیدروالکلی, ترب سیاه,

ملخص المقالة :

این مطالعه به منظور بررسی اثر عصاره هیدروالکلی ترب سیاه (Raphanus sativua) بر شمارش کامل سلول های خونی و عملکرد کلیه در موش سوری انجام شد. 40 سر موش سفید به چهار گروه مساوی تقسیم شدند. موش های گروه کنترل فقط محلول فیزیولوژیکی دریافت کردند و موش های گروه دوم تا چهارم به ترتیب، روزانه به میزان 50، 100 و 150 میلی گرم/کیلوگرم وزن بدن، عصاره گیاهی ترب سیاه از طریق تزریق داخل صفاقی دریافت کردند. پس از دوره آزمایش 21 روزه، خونگیری از قلب جهت شمارش کامل سلول های خونی (هماتوکریت، هموگلوبین، تعداد گلبول های قرمز و سفید) و اندازه‌گیری ‌ازت اوره و کراتینین سرم انجام شد. نتایج نشان داد که تیمار با عصاره ترب سیاه در هیچ کدام از دوزهای مورد مطالعه، تغییر معنی داری در شمارش سلول های خونی و میزان ازت اوره و کراتینین ایجاد نمی کند (05/0< p). این نتایج با بررسی هیستوپاتولوژیک کلیه تایید شد. تیمار موش ها با عصاره ترب، منجر به کاهش غیر معنی دار ازت اوره خون و کراتینین نسبت به گروه کنترل گردید. همچنین با افزایش دوز عصاره، میزان ازت اوره و کراتینین در هر گروه نسبت به گروه قبلی کاهش داشت، هر چند این کاهش معنی دار نبود (05/0< p). نتایج مطالعه حاضر حاکی از عدم سمیت کلیوی عصاره در دوزهای مصرفی در مطالعه می باشد و می توان گفت در شرایط فیزیولوژیک، استفاده از عصاره هیدروالکلی ترب سیاه نه تنها در دوزهای بالا اثر سمی بر کلیه ندارد، بلکه دارای اثرات مثبت بر روی عملکرد کلیه می باشد.

المصادر:

1. Agarwal K., Varma R. 2014. Radical scavenging ability and biochemical screening of a common Asian vegetable-Raphanus sativus L. International Journal of Pharmaceutical Sciences Review and Research, 27(1):127-134.


2. Alqasoumi S., Al-Yahya M., Al-Howiriny T.A.W.F.E.Q., Rafatullah, S.Y.E.D. 2008. Gastroprotective effect of radish``Raphanus sativus'' on experimental gastric ulcer models in rats. Farmacia-Bucuresti, 56(2):204.


3. Al-Timimi M.L.M., Hassan E.S., Al-Nafakh R.T., Lteef Alfadhul S.A., Mohammad A.R., 2019. Biochemical study of the protective effect of vitamin c and radish on gentamicin-induced nephrotoxicity in rats. Indian Journal of Forensic Medicine and Toxicology, 13(4):436-440.


4. Aziz F.M., Hassan D.H. 2020. Radish juice promote kidney stone deposition in ethylene glycol-induced urolithiasis in rats. Cihan University-Erbil Scientific Journal, 4(1):57-61.


5. Bortis K. 2000. Principles of Clinical Biochemistry of Tate. Andisheh Rafi Publications, 2:449-568.


6. Castro‐Torres I.G., De la O‐Arciniega M., Gallegos‐Estudillo J., Naranjo‐Rodríguez E.B., Domínguez‐Ortíz M.Á., Raphanus sativus L. 2014. var niger as a source of phytochemicals for the prevention of cholesterol gallstones. Phytotherapy Research, 28:167-171.


7. Dai J., Mumper R.J. 2010. Plant phenolics: extraction, analysis and their antioxidant and anticancer properties. Molecules, 15(10):7313-7352.


8. Dhahir M.R., AL-Naely A.J., 2022. Effect of alcoholic and nano-extract of red radish, Raphanus sativua on liver and kidney function in rats induced jaundiced. Iranian Journal of Ichthyology, 9:148-160.


9. Goorani S., Shariatifar N., Seydi N., Zangeneh A., Moradi R., Tari B., Nazari F., Zangeneh M.M., 2019. The aqueous extract of Allium saralicum RM Fritsch effectively treat induced anemia: experimental study on Wistar rats. Oriental Pharmacy and Experimental Medicine, 19(4):403-413.


10. Ibrahim L.F., Elkhateeb .A., Marzouk M.M., Hussein S.R., Abdel-Hameed E.S.S., Kassem M.E. 2016. Flavonoid investigation, LC–ESI-MS profile and cytotoxic activity of Raphanus raphanistrum (Brassicaceae). Journal of Chemical and Pharmaceutical Research, 8(7):786-793.


11. Ishida M., Hara M., Fukino N., Kakizaki T., Morimitsu Y. 2014. Glucosinolate metabolism, functionality and breeding for the improvement of Brassicaceae vegetables. Breeding Science, 64(1):48-59.


12. Jan M., Badar A. 2012. Effect of crude extract of Raphanus sativus roots on isolated trachea of albino rat. Pakistan Journal of Physiology, 8(1):23-26.


13. Kutshik R.J., Jiyil M.K., Mafuyai C.E., Ichor L.L. 2020. Anti-Anaemic Effect of Cnidoscolus chayamansa (Mc Vaugh) Leaf Extract on Phenyl Hydrazine-Treated Rats. Journal of Advancesin Biology and Biotechnology, 23(11):23-32.


14. Lugasi A., Dwoeschak E., Blazovics A., Kery A. 2001. Antioxidant and free radical scavenging properties of squeezed juice from black radish (Raphanus sativus L. var niger) root. Phytotherapy Research, 12(7):502-506.


15. Mahjoubi-Samet A., Fetoui H., Zeghal N. 2008. Nephrotoxicity induced by dimethoate in adult rats and their suckling pups. PesticideBiochemistry and Physiology, 91(2):96-103.


16. Man’s D.R., Rocha A.B., Schwartsmann G. 2000. Anticancer drug discovery and development in Brazil: Targeted plant collection as a rational strategy to acquire candidate anticancer compound. The Oncologist, 5(3):185-98.


17. Nowack R., Flores-Suarez F., Birck R., Schmitt W., Benck U. 2011. Herbal treatments of glomerulonephritis and chronic renal failure: Review and recommendations for research. Journal of Plant Pathology, 3(9):124-136.


18. Ochekpe N.A., Olorunfemi P.O., Ngwuluka N.C. 2009. Nanotechnology and drug delivery part 1: background and applications. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 8(3): 265-274.


19. Rehman K., Akash M.S., Azhar .S., Khan S.A., Abid R., Waseem A., Murtaza G., Sherazi T.A. 2012. A biochemical and histopathologic study showing protection and treatment of gentamicin-induced nephrotoxicity in rabbits using vitamin C. African Journal of Traditional, Complementary and Alternative Medicines, 9(3):360-365.


20. Sadeek R.A., Abd Elsabor R.G., Hassan H.M. Potential protective effects of red radish (Raphanus sativus) in alleviation of health complications caused by ibuprofen. April 2018 Conference: Tenth Annual International Scientific Conference (Specific scientific conference in Egypt and the Arab world in the light of sustainable development strategies). At: Faculty of Specific Education At: Mansoura University.


21. Sadeghi T., Shariati M., Mokhtari M. 2019. The effect of Passiflora caerulea leaf hydroalcohol extract on some biochemical factors in adult male rat. Journal of Animal Physiology and Development, 12(1):59-67.


22. Salah‐Abbès J.B., Abbès S., Ouanes Z., Houas Z., Abdel‐Wahhab M.A., Bacha H., Oueslati R. 2008. Tunisian radish extract (Raphanus sativus) enhances the antioxidant status and protects against oxidative stress induced by zearalenone in Balb/c mice. Journal of Applied Toxicology. 28(1):6-14.


23. Sindhu G., Nishanthi E., Sharmila R. 2015. Nephroprotective effect of vanillic acid against cisplatin induced nephrotoxicity in wistar rats: a biochemical and molecular study. Environmental Toxicology and Pharmacology, 39(1):392-404.


24. Sipos P., Hagymasi K., Lugasi A., Feher E., Blazovics A. 2002. Effects of black radish root (Raphanus sativus var niger) on the colon mucosa in rats fed a fat rich diet. Phytotherapy Research, 16(7): 677-679.


25. Suh S.J., Moon S.K., Kim C.H. 2006. Raphanus sativusand its isothiocyanates inhibit vascular smooth muscle cells proliferation and induce G1 cell cycle. International Immunopharmacology, 6(5): 854–861.


26. Takaya Y., Kondo Y., Furukawa T., Niwa M. 2003. Antioxidant constituents of radish sprout (Kaiware-daikon), Raphanus sativus Journal of Agricultural and Food Chemistry, 51(27):8061-8066.