بررسی عیار آنتی بادی ناشی از تزریق دزهای مختلف ایمونوژن منهمیا همولیتیکا در گوسفند برای اولین بار در ایران
الموضوعات :
هاجر مولائی
1
,
یحیی تهمتن
2
,
عاطفه شیرازی زاده
3
1 - مؤسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی شعبه شیراز
2 - بخش باکتری شناسی موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی شیراز
3 - مؤسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی شعبه شیراز
الکلمات المفتاحية: منهمیا همولیتیکا, ایمونوژن غیر فعال, گوسفند, الایزا.,
ملخص المقالة :
سابقه و هدف: باکتری منهیمیا همولیتیکا یکی از اصلی ترین گونه های باکتریایی مرتبط با بیماری های ریوی در نشخوارگنندگان میباشد و به صورت طبیعی در بخش فوقانی سیستم تنفسی حیوان وجود دارد. این باکتری یک گونه ی فرصت طلب است و زمانی که دفاع میزبان در اثر استرس و عفونت با ویروس های تنفسی یا مایکوپلاسما به خطر می افتد به ریه ها دسترسی پیدا می کند. آنتی‌بیوتیک‌ها یکی از روش های درمان هستند، اما افزایش جهانی مقاومت آنتی‌بیوتیکی اثربخشی آن ها را کاهش میدهد. بنابراین استفاده از واکسن برای کنترل بیماری به صورت گسترده ای انجام می شود اگرچه دوام واکسن های موجود بالا نیست و نیاز به بهبود کارایی آنها مورد نیاز است. هدف از این مطالعه، تهیه ایمونوژن غیرفعال منهمیا همولیتیکا و تعیین دز مناسب جهت ایمنی زایی گوسفندان می باشد. مواد و روش ها: روش مولکولی جهت تعیین هویت جدایه ها استفاده شد. سپس ایمونوژن غیرفعال به همراه ادجوانت آلوم در دزهای مختلف 0/5، 1، 1/5 و 2 میلی لیتر به گوسفندان تزریق شد. یافته ها: نتایج الایزا نشان دهنده ترشح آنتی بادی ها و ایجاد ایمنی هومورال به صورت طولانی مدت در گوسفندان بود. دز مناسب 1 میلی لیتر به دست آمد. نتیجه گیری: با توجه به عدم وجود واکسن غیرفعال M. haemolytica در ایران، نتایج این تحقیق در کنترل عفونت آن حائز اهمیت بوده و اطلاعات مفیدی را برای ساخت واکسن در ایران ارائه می دهد.
1. Jesse F, Boorei M, Chung E, Wan-Nor F, Lila MM, Norsidin M, Isa K, Amira N, Maqbool A, and Odhah M. A review on the potential effects of Mannheimia haemolytica and its immunogens on the female reproductive physiology and performance of small ruminants. Journal of Animal Health and Production. 2020.
2. Zamri-Saad M, Azri A, Nurida A, and Sheikh-Omar A. Experimental respiratory infection of goats with Mycoplasma arginini and Pasteurella haemolytica A2. PERTANIKA. 1994. 17; 239-239.
3. Blackall P, Bojesen AM, Christensen H, and Bisgaard M. Reclassification of [Pasteurella] trehalosi as Bibersteinia trehalosi gen. nov., comb. nov. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2007. 57(4); 666-674.
4. Ferede Y, Mekuriaw S, Mazengia H, and Amane A. Serotyping and evaluation of the level of protective antibody titer in Northwest Ethiopian sheep before and after ovine pasteurollosis vaccination. Int J Pharm Med Bio Sc. 2013. 2(4).
5. Deressa A, Asfaw Y, Lubke B, Kyule M, Tefera G, and Zessin K. Molecular detection of Pasteurella multocida and Mannheimia haemolytica in sheep respiratory infections in Ethiopia. The Journal of Applied Research in Veterinary Medicine. 2010. 8(2); 101.
6. Dassanayake RP, Shanthalingam S, Herndon CN, Lawrence PK, Cassirer EF, Potter KA, Foreyt WJ, Clinkenbeard KD, and Srikumaran S. Mannheimia haemolytica serotype A1 exhibits differential pathogenicity in two related species, Ovis canadensis and Ovis aries. Veterinary microbiology. 2009. 133(4); 366-371.
7. Legesse A, Abayneh T, Mamo G, Gelaye E, Tesfaw L, Yami M, and Belay A. Molecular characterization of Mannheimia haemolytica isolates associated with pneumonic cases of sheep in selected areas of Central Ethiopia. BMC microbiology. 2018. 18; 1-10.
8. Lamm CG, Love BC, Krehbiel CR, Johnson NJ, and Step DL. Comparison of antemortem antimicrobial treatment regimens to antimicrobial susceptibility patterns of postmortem lung isolates from feedlot cattle with bronchopneumonia. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 2012. 24(2); 277-282.
9. Anholt RM, Klima C, Allan N, Matheson-Bird H, Schatz C, Ajitkumar P, Otto SJ, Peters D, Schmid K, and Olson M. Antimicrobial susceptibility of bacteria that cause bovine respiratory disease complex in Alberta, Canada. Frontiers in Veterinary Science. 2017. 4; 207.
10. Sahay S, Natesan K, Prajapati A, Kalleshmurthy T, Shome BR, Rahman H, and Shome R. Prevalence and antibiotic susceptibility of Mannheimia haemolytica and Pasteurella multocida isolated from ovine respiratory infection: A study from Karnataka, Southern India. Veterinary World. 2020. 13(9); 1947.
11. Sarkander J, Hojyo S, and Tokoyoda K. Vaccination to gain humoral immune memory. Clinical & translational immunology. 2016. 5(12); e120.
12. Gupta A and Chaphalkar SR. Vaccine adjuvants: the current necessity of life. Shiraz E-Medical Journal. 2015. 16(7).
13. Molaee H, Tahamtan Y, Saeednezhad E, and Hayati M. Isolation of the various serotypes of Mannheimia haemolytica and preparation of the first vaccine candidate in Iran. Molecular Biology Reports. 2022. 49(11); 10367-10375.
14. Kumar J, Dixit SK, and Kumar R. Rapid detection of Mannheimia haemolytica in lung tissues of sheep and from bacterial culture. Veterinary World. 2015. 8(9); 1073.
15. Confer AW, Ayalew S, Panciera RJ, Montelongo M, and Wray JH. Recombinant Mannheimia haemolytica serotype 1 outer membrane protein PlpE enhances commercial M. haemolytica vaccine-induced resistance against serotype 6 challenge. Vaccine. 2006. 24(13); 2248-2255.
16. García-Alvarez A, Fernández-Garayzábal JF, Chaves F, Pinto C, and Cid D. Ovine Mannheimia haemolytica isolates from lungs with and without pneumonic lesions belong to similar genotypes. Veterinary microbiology. 2018. 219; 80-86.
17. Ackermann MR and Brogden KA. Response of the ruminant respiratory tract to Mannheimia (Pasteurella) haemolytica. Microbes and infection. 2000. 2(9); 1079-1088.
18. Abbasi K, Tahamtan Y, Moazamian E, and Hosseini MH. Formalin and ferric chloride inactivated Pasteurella multocida type a adjuvanted with bacterial DNA and alum as a new vaccine candidate in sheep pasteurellosis. Microbial Pathogenesis. 2023. 183; 106282.
19. Boumart Z, Bamouh Z, Semmate N, Tadlaoui KO, and El-Harrak M. Biological characterisation and pathogenicity of a Pasteurella multocida isolate from sheep in Morocco. J. Agric. Sci. Technol. A. 2021. 11; 53-64.
20. Wilson BA and Ho M. Pasteurella multocida: from zoonosis to cellular microbiology. Clinical microbiology reviews. 2013. 26(3); 631-655.
21. Kisiela DI, Aulik NA, Atapattu DN, and Czuprynski CJ. N‐terminal region of Mannheimia haemolytica leukotoxin serves as a mitochondrial targeting signal in mammalian cells. Cellular microbiology. 2010. 12(7); 976-987.
22. Thomson R, Chander S, Savan M, and Fox M. Investigation of factors of probable significance in the pathogenesis of pneumonic pasteurellosis in cattle. Canadian Journal of Comparative Medicine. 1975. 39(2); 194.
23. Matsumoto M, Schmitz J, Syuto B, Watrous B, and Mattson D. Immunogenicity of a soluble antigen against Pasteurella haemolytica-associated pneumonia in calves. Veterinary research communications. 1984. 8; 117-130.
24. Zhao X, Yang F, Shen H, Liao Y, Zhu D, Wang M, Jia R, Chen S, Liu M, and Yang Q. Immunogenicity and protection of a Pasteurella multocida strain with a truncated lipopolysaccharide outer core in ducks. Veterinary Research. 2022. 53(1); 1-12.
