تاثیر عصاره گیاه رازیانه بر فعالیت پروبیوتیک های موجود در مگس سرکه و بررسی تاثیر آن بر باروری مگس سرکه نر
الموضوعات : مجله پلاسما و نشانگرهای زیستی
ابوالحسن رضایی
1
(گروه ژنتیک، دانشکده زیست شناسی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تنکابن، تنکابن، ایران)
مسعود قانع
2
(گروه میکروبیولوژی، دانشکده زیست شناسی، دانشگاه آزاد اسالمی واحد تنکابن، تنکابن، ایران)
شیدا اخشابی
3
(گروه ژنتیک، دانشکده زیست شناسی، دانشگاه آزاد اسالمی واحد تنکابن، تنکابن، ایران)
الکلمات المفتاحية: گیاه رازیانه, پروبیوتیک, مگس سرکه نر,
ملخص المقالة :
زمینه و هدف: گزارشات متعددی مبنی بر تاثیر پروبیوتیک ها در افزایش باروری نیز وجود دارد. پروبیوتیک ها با فعالیت داخل روده گوارشی باعث تولید ویتامین ها و پروتئین های متعدد میشوند که جهت باروری در مگس ها و به طور کلی در ارگانیسم های مختلف نیازمند می باشد.در تحقیق حاضر تاثیر عصاره گیاه رازیانه بر باروری مگس سرکه و نقش پروبیوتیک ها در آن مورد بررسی قرار گرفته است. روش کار: عصاره رازیانه به غلظت های مختلف 25، 50 و mg/ml 75 به محیط کشت اضافه شد. سپس تعداد اسپرم های مگس نر در زیر میکروسکوپ نوری با قرار دادن محیط A شمارش گردیدند. تعداد سلول های غده جنسی، سایز سلول ها و اندازه غده جنسی به کمک میکروسکوپ نوری مشاهده شدند، هم چنین میزان پروتئین های غدد جنسی نیز جداسازی و با روش PCRبررسی و همه داده ها به کمک SPSS آنالیزگردید. یافته ها: میانگین شمارش اسپرم ها 6440 و 3995 عدد، تعداد سلول های غده جنسی 3502 و 1364 عدد، سایز سلول های غده جنسی 0.0675 و 0.0286 میلی متر مربع، سایز غده جنسی 0.339 و 0.391سانتی متر مربع، نتایج نشان داد که میزان پروتئین های جنسی 61/19 و 95/16 میکروگرم،به ترتیب در غلظت رازیانه(mg/ml ۷۵) و غلظت(mg/ml25) بودند، می باشد، نتایج آنالیز نشان داد که تاثیر معنی داری اثر رازیانه در افزایش باروری داشته است.با تکنیک PCR نیز یک باند تقریباً bp 300 بر روی ژل مشاهده گردید. نتیجه گیری:نتایج تحقیق نشان داد زمانی که از غلظت بیشتر عصاره رازیانه(mg/ml75) در محیط کشت استفاده شد، میزان باروری در مگس سرکه نر بیشتر از غلظت کمتر(mg/ml 25) و هم چنین گروه کنترل بودند. در تحقیق حاضر وجود پروبیوتیک ها نشان دهنده تغییرات در محیط کشت و تاثیر آن در میزان باروری است.
1.Asare, R. Akimana, C. Jones, S. Abu Kwaik, Y. (2011). Molecular bases of proliferation of Francisella tularensis in arthropod vectors. Environmental Microbiology, 13(12); 3311–3311.
2.Ashburner, M. (1970). Patterns of puffing activity in the salivary gland chromosomes of Drosophila. V. Responses to environmental treatments. Chromosoma, 31: 356--376.
3.Ahlund, M.K., Ryden, P., Sjostedt, A., Stoven, S. (2011). Directed screen of Francisella novicida virulence determinants using Drosophila melanogaster. Infect. Immun., 78; 3118–3128.
4.Beadle, G.W., Ephrussi, B. (1935a). Differenciation de la couleur de l'oeil cbnabav chez la Drosophile (Drosophila nzelanognster). C. R. Acad. Sci. Paris., 201; 620-622.
5.Bahmani, K., Izadi Darbandi, A., Sadat Noori, S.A., Jafari, A.A. (2013). Assessment of the genetic diversity in Iranian fennels by RAPD markers. Journal of Herbs, Spices & Medicinal Plants., 19; 275- 285
6.Buchon, N., Broderick, N. A., Poidevin, M., Pradervand, S., Lemaitre, B. (2009a). Drosophila intestinal response to bacterial infection: activation of host defense and stem cell proliferation. Cell Host Microbe, 5; 200-211.
7.Bing, X., Gerlach, J., Loeb, G., Buchon, N. (2018). Nutrient-dependent impact of microbes on Drosophila suzukii development. mBio, 9; e02199-17.
8.Blum, J.E., Fischer, C.N., Miles, J., Handelsman, J. (2013). Frequent replenishment sustains the beneficial microbiome of Drosophila melanogaster. mBio, 4; e00860-13.
9.Chaston, J.M., Newell, P.D., Douglas, A.E. (2014). Metagenome-wide association of microbial determinants of host phenotype in Drosophila melanogaster. mBio, 5; e01631-14.
10.Corby Harris, V., Pontaroli, AC., Shimkets, LJ., Bennetzen, JL., Habel, KE. (2007). Geographical distribution and diversity of bacteria associated with natural populations of Drosophila melanogaster. Applied and Environmental Microbiology, 73; 3470-3479.
11.Fischer, C., Trautman, E.P., Crawford, J.M., Stabb, E.V., Handelsman, J., Broderick, N. (2017). Metabolite exchange between microbiome members produces compounds that influence Drosophila behavior. eLife, 6; e18855.
12.Forester, SC., Lambert, JD. (2011). The role of antioxidant versus pro-oxidant effects of green tea polyphenols in cancer prevention. Molecular Nutrition and Food Research, 55(6); 844– 854.
13.Fujiki, H., Sueoka, E., Watanabe, T., Suganuma, M. (2015). Primary cancer prevention by green tea, and tertiary cancer prevention by the combination of green tea catechins and anticancer compounds. Journal of Cancer Prevention, 20(1); 1–4.
14.Healy, DL., Trounson, AO., Andersen, AN. (1994). Female infertility: causes and treatment. Lancet, 343; 1539-44.
15.Ghasemi-Pirbaluti, M., Pourgheysari, B., Shirzad, H., Motaghi, E., Dehkordi, NA. (2015). Effect of epigallocatechin-3-gallate (EGCG) on cell proliferation inhibition and apoptosis induction in lymphoblastic leukemia cell line. Journal of Herbmed Pharmacology, 4(2); 65–68.
16.Ghasemi, V., Kheirkhah, M., Vahedi, M. (2015). The Effect of herbal tea containing fenugreek seed on the signs of breast milk sufficiency in iranian girl infants. Iran Red Crescent Med J, 17(8); e21848.
17.Gueimonde, M., Delgado, S., Mayo, B., Ruas-Madiedo, P., Margolles, A., de los Reyes-Gavilán, C.G. (2004). Viability and diversity of probiotic Lactobacillus and Bifidobacterium populations included in commercial fermented milks. Food Research International, 37; 839-850.
18.Kolosnjaj, J., Szwarc, H. (2007). Toxicity studies of fullerenes and derivatives. Adv Exp Med Biol, 620; 168-180.
19.Khazaei, M., Montaseri, A., Khazaei, MR., Khanahmadi, M. (2011). Study of foeniculum vulgare effect on folliculogenesis in female mice. Int. J. Fertil. Steril., 5; 122-7.
20.McFall-Ngai, M. (2013). Animals in a bacterial world, a new imperative for the life sciences. Proc. Natl Acad. Sci. USA., 110; 3229–3236.
21.Monsma, SA., Wolfner, MF. (1988). Structure and expression of a Drosophila male accessory gland gene whose product resembles a peptide pheromone precursor. Genes Dev, 2; 1063–73.
22. Namavar, JB., Tartifizadeh, A., Khabnadideh, S. (2003). Comparison of fennel and mefenamic acid for the treatment of primary dysmenorrhea. Int J Gynaecol Obstet, 80; 153-7.
23.Nazari, A., Roozbehani, S. (2015). Influence of fennel foeniculum vulgar extract on fertility, growth rate and histology of gonads on guppy Poecilia reticulata. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 15; 463-469.
24.Noorbala, AA., Ramezanzadeh, F., Malakafzali, H., Abedinia, N., Rahimi Foroushani, A., Shariet, M. (2008). Effectiveness of psychiatric interventions on depression rate in infertile couples referred to vali-asr reproductive health research center. Hakim Res J, 10(4);17-26. (Persian).
25.Olang, B., Farivar, K., Heidarzadeh, A., Strandvik, B., Yngve, A. (2009). Breast feeding in Iran: prevalence, duration and current recommendations. International Breastfeeding Journal, 4;8-11.
26.Orlando, G., García Arrarás, J E., Soker, T., Booth, C., Sanders, B. (2012). Regeneration and bio engineering of the gastrointestinal tract: Current status and future perspectives. Digestive and Liver Disease, 44; 714-720.
27.Panayidou, S., Ioannidou, E., Apidianakis, Y. (2014). Human pathogenic bacteria, fungi, and viruses in Drosophilae: Disease modeling, lessons, and shortcomings. Virulence, 5; 253-269.
28.Ravi Ram, K., Ramesh, SR. (200). Male accessory gland secretions in D. nasuta subgroup: Qualitative and quantitative correlations. Dros. Inf. Serv., 85; 1-3.
29.Rogan, WJ., Glanden, BC. (1993). Breast feeding and cognitive development. Early Hum Dev., 31(3); 181-193.
30.Shin, SC., Kim, SH., You, H., Kim, B., Kim, AC. (2011). Drosophila microbiome modulates host developmental and metabolic homeostasis via insulin signaling. Science, 334;670–674.
31.Senatore, F., Oliviero, F., Scandolera, E., Taglialatela-Scafati, O., Roscigno, G., Zaccardelli, M. (2013). Chemical composition, antimicrobial and antioxidant activities of anethole-rich oil from leaves of selected varieties of fennel [Foeniculum vulgare Mill. ssp. vulgare var. azoricum (Mill.) Thell]. Fitoterapia, 90; 214-9.
32. Samsum shariat, H. (1386). Extraction of effective substance from drug plants. 2nd ed. Esfehan: Manni; 12-20.
33.Speroff, LE., Fritz, MA. (1999). Clinical gynecologic endocrinology and infertility. 6 th ed. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins, 1015-37.
34.Storelli, G., Defaye, A., Erkosar, B., Hols, P., Royet, J., Leulier, F. (2011). Lactobacillus plantarum promotes Drosophila systemic growth by modulating hormonal signals through TOR-dependent nutrient sensing. Cell Metab, 14; 403-414.
35.Sharma, V., Allgar, V., Rajkhowa, M. (2002). Factors influencing the cumulative conception rate and discontinuation of in vitro fertilization treatment for infertility. Fertil Steril, 78(1);40-6.
36.Vanha-aho, L., Anderl, M., Vesala, I., Hultmark, L., Valanne, D., Rämet M. (2015). Edin expression in the fat body is required in the defense against parasitic wasps in Drosophila melanogaster. PLoS Pathog, 11;112-118.
37.Zhao, E., Qing, MU. (2010). Phytoestrogen biological actions on mammalian reproductive
_||_