بررسی اثر متام سدیم بر مهار علف‌های هرز، گل جالیز (Phelipanche aegyptiaca Pers.) و تنفس میکروبی خاک در گوجه فرنگی (Lycopersicon esculentum Mill.)

الموضوعات : بوم شناسی علف‌های هرز

عادله عصاران ¹ (دانش‌آموخته کارشناسی ارشد شناسایی و مبارزه با علف‌های هرز دانشگاه آزاد اسلامی، واحد مشهد)
محمدحسن هادی‌زاده ² (استادیار بخش تحقیقات گیاه پزشکی مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی خراسان رضوی)
کیومرث بخش‌کلارستاقی ³ (استادیار گروه زراعت، دانشگاه آزاد اسلامی مشهد)
سید حسین ترابی ⁴ (محقق بخش تحقیقات گیاه پزشکی مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی خراسان رضوی)

تاريخ الإرسال : 22 الجمعة , ذو الحجة, 1432 تاريخ التأكيد : 01 السبت , ذو القعدة, 1434 تاريخ الإصدار : 16 الجمعة , شوال, 1434

الکلمات المفتاحية: عملکرد, yield, گامپرتز, Gompertz, دز-پاسخ, لجیستیک, Dose-response, Logistic,

ملخص المقالة :

گل جالیز یکی از مهم ترین علف‌های هرز مزارع گوجه فرنگی است و یکی از روش‌های مبارزه با آن استفاده از مواد تدخینی است. پژوهشی به این منظور طی سال 1390در منطقه مشهد در مزرعه نمونه متعلق به آستان قدس رضوی به اجرا درآمد. آزمایش در قالب طرح پایه بلوک‌های کامل تصادفی با 6تیمار شامل صفر، 500، 750، 1000 و 1250 و 1500 کیلوگرم در هکتار متام سدیم از ماده تجارتی واپام(7/32 درصد-اس ال) در 4 تکرار پیاده شد. هر کرت به دو قسمت تقسیم شد و در یک نیمه علف‌های هرز به جز گل جالیز وجین دستی شدند ولی در نیمه دیگر هیچ وجینی انجام نشد. متام سدیم با استفاده از دستگاه خودکار تزریق قلمی به کار برده شد. تعداد اندام هوایی و وزن خشک ‌گل جالیز در نیمه کرت عاری از علف‌های هرز و سایر علف‌های هرز در نیمه وجین نشده اندازه گیری شد. نتایج نشان داد که کاهش آلودگی علف‌های هرز در اثر مصرف متام سدیم تابع منحنی لجیستیک با سه پارامتر بود. حساسیت علف‌های هرز مختلف متفاوت بود به طوریکه علف‌‌های هرز شامل تاج خروس و سلمه با ED50 معادل 474 و 775 لیتر در هکتار تحمل بیشتری نسبت به خرفه، تاج ریزی و سوروف نشان دادند. با این حال عملکردی از کرت‌های وجین نشده برداشت نشد. تراکم گل جالیز در کرت‌های عاری از سایر علف هرز دارای روند مشخصی نبود، ولی تعداد میوه و عملکرد گوجه فرنگی در واحد سطح به طور خطی با مصرف متام سدیم افزایش داشت. تاثیر متام سدیم بر کاهش تنفس میکروبی خاک از معادله غیر خطی گامپرتز پیروی کرد.

المصادر:

- بحرینی، ح. و م. گیتی. 1387. اثرات استفاده از سم واپام برای کنترل نماتد سیستی سیب زمینی در همدان. سومین همایش یافته‌های پژوهشی کشاورزی و منابع طبیعی (غرب کشور).

2- دفتر آمار و فناوری اطلاعات وزارت جهاد کشاورزی. 1389. آمارنامه کشاورزی، جلد اول محصولات زراعی سال زراعی 1388-1387. وزارت جهادکشاورزی، معاونت برنامه ریزی و اقتصادی.

3- شیخی. 1388. راهنمای آفت کش‌های ایران. انتشارات کتاب پایتخت تهران.

4- مین باشی معینی. 1383. گل جالیز. انتشارات موسسه تحقیقات آفات و بیماری‌های گیاهی.

5- هادی­زاده. 1387. بررسی اثر افزایش مواد آلی خاک و میزان مصرف علف‌کش سولفوسولفورون بر درجه پایداری آن و ویژگی‌های زیستی خاک در گندم. پایان نامه دکتری علف‌های هرز. دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد.

6- هادی­زاده. 1390. بررسی راه‌کارهای مدیریت گل جالیز در گوجه فرنگی بر مبنای کاربرد علف‌کش گلایفوسیت، سولفوسولفورون در تلفیق با سولفات آمونیوم یا استفاده از کلش. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی به شماره 89137-16-43-4: در دست انتشار.

 

7- Abu-Irmaileh, B.E. and R. Labrada. 2005. The problem of Orobanche spp. In africa and near east. Plant Protection and Production Division-Pest Management Weed Management, FAO-Rome, available at: http://www.fao.org/AG/AGP/AGPP/IPM/Weeds/weedpublic.htmchallenging

8- Ajwa, H., W.J. Ntow, R. Qin and S. Gao. 2010. Properties of soil fumigants and their fate in the environment. In: Krieger, R. (Ed.), Hayes’ handbook of pesticide toxicology. Academic Press, 315-330.

9- Ajwa, H., T. Trout, J. Mueller, S. Wilhelm, S. Nelson, R. Soppe and D. Shatley. 2002. Application of alternative fumigants through drip irrigation systems. Phytopathology, 92: 1349-1355.

10- Aly, R. 2007. Conventional and biotechnological approaches for control of parasitic weeds. In Vitro Cell. Dev. Biol—Plant. 43: 304-317.

11- Bülbül, F., E. Aksoy, S. Uygur and N. Uygur. 2009. Broomrape (Orobanche spp.) problem in the eastern mediterranean region of Turkey. Helia. 32: 141-152.

12- Desaeger, J., A. Csinos, P. Timper, G. Hammes and K. Seebold. 2004. Soil fumigation and oxamyl drip applications for nematode and insect control in vegetable plasticulture. Ann. App. Bio. 145: 59-70.

13- Desaeger, J.A., K.W. Seebold and A.S. Csinos. 2008. Effect of application timing and method on efficacy and phytotoxicity of 1,3-d, chloropicrin and metam-sodium combinations in squash plasticulture. Pest Manag. Sci. 64: 230-238.

14- Dungan, R.S. and S.R. Yates. 2003. Degradation of fumigant pesticides: 1,3-dichloropropene, methyl isothiocyanate, chloropicrin, and methyl bromide. Vadose Zone Jo. 2: 279-286.

15- El-Halmouch, Y., H. Benharrat and P. Thalouarn. 2006. Effect of root exudates from different tomato genotypes on broomrape (O. aegyptiaca) seed germination and tubercle development. Crop Prot. 25: 501-507.

16- Elzein, A. and J. Kroschel. 2003. Progress on management of parasitic weeds. FAO Plant Production and Protection Paper (FAO).

17- Fenández-Aparicio, M., J.C. Sillero and D. Rubiales. 2007. Intercropping with cereals reduces infection by Orobanche crenata in legumes. Crop Prot. 26: 1166-1172.

18- Fernández-Aparicio, M., A.A. Emeran and D. Rubiales. 2008. Control of Orobanche crenata in legumes intercropped with fenugreek (Trigonella foenum-graecum). Crop Prot. 27: 653-659.

19- Fernández-Aparicio, M., A.A. Emeran and D. Rubiales. 2010. Inter-cropping with berseem clover (Trifolium alexandrinum) reduces infection by Orobanche crenata in legumes. Crop Prot. 29: 867-871.

20- Gerik, J.S. and B.D. Hanson. 2011. Drip application of methyl bromide alternative chemicals for control of soilborne pathogens and weeds. Pest Manag. Sci. 67: 1129-1133.

 

21- Gilreath, J.P., J.P. Jones, B.M. Santos and A.J. Overman. 2004. Soil fumigant evaluations for soilborne pest and Cyperus rotundus control in fresh market tomato. Crop Prot. 23: 889-893.

22- Gilreath, J.P. and B.M. Santos. 2004. Methyl bromide alternatives for weed and soilborne disease management in tomato (Lycopersicon esculentum). Crop Prot. 23: 1193-1198.

23- Goldwasser, Y., H. Eizenberg, J. Hershenhorn, D. Plakhine, T. Blumenfeld, H. Buxbaum, S. Golan and Y. Kleifeld. 2001. Control of Orobanche aegyptiaca and O. ramosa in potato. Crop Prot., 20: 403-410.

24- Ibekwe, A.M., S.K. Papiernik, J. Gan, S.R. Yates, C.H. Yang and D.E. Crowley. 2001. Impact of fumigants on soil microbial communities. App Environ Mic. 67: 3245-3257.

25- Joel, D.M. 2000. The long-term approach to parasitic weeds control: Manipulation of specific developmental mechanisms of the parasite. Crop Prot. 19: 753-758.

26- Klose, S., V. Acosta-Martínez and H.A. Ajwa. 2006. Microbial community composition and enzyme activities in a sandy loam soil after fumigation with methyl bromide or alternative biocides. Soil Biol. Biochem. 38: 1243-1254.

27- Klose, S., H.A. Ajwa, G.T. Browne, K.V. Subbarao, F.N. Martin, S.A. Fennimore and B.B. Westerdahl. 2008. Dose response of weed seeds, plant-parasitic nematodes, and pathogens to twelve rates of metam sodium in a california soil. Plant Dis. 92: 1537-1546.

28- Klose, S., H.A. Ajwa, S.A. Fennimore, F.N. Martin, G.T. Browne and K.V. Subbarao. 2007. Dose response of weed seeds and soilborne pathogens to 1,3-d and chloropicrin. Crop Prot. 26: 535-542.

29- Kroschel, J. 2002. A technical manual for parasitic weed research and extension. Kluwer Academic Pub.

30- Macalady, J.L., M.E. Fuller and K.M. Scow. 1998. Effects of metam sodium fumigation on soil microbial activity and community structure. J. Environ. Qual. 27: 54-63.

31- Matusova, R., K. Rani, F.W.A. Verstappen, M.C.R. Franssen, M.H. Beale and H.J. Bouwmeester. 2005. The strigolactone germination stimulants of the plant-parasitic striga and Orobanche spp. are derived from the carotenoid pathway. Plant Physiol., 139: 920-934.

32- Ritz, C. and J.C. Streibig. 2005. Bioassay analysis using R. J. Statistic. Soft 12: 1–22.

33- Rubiales, D., M. Fernández-Aparicio, K. Wegmann and D.M. Joel. 2009. Revisiting strategies for reducing the seedbank of Orobanche and Phelipanche spp. Weed Res. 49: 23-33.

34- Santos, B.M., J.P. Gilreath, T.N. Motis, J.W. Noling, J.P. Jones and J.A. Norton. 2006. Comparing methyl bromide alternatives for soilborne disease, nematode and weed management in fresh market tomato. Crop Prot. 25: 690-695.

35- Smelt, J., S. Crum and W. Teunissen. 1989. Accelerated transformation of the fumigant methyl isothiocyanate in soil after repeated application of metham-sodium. J. Environ. Sci. Health. Part B. Pestic., Food contam. Agric. Wastes 24: 437-455.

36- Stromberger, M.E., S. Klose, H. Ajwa, T. Trout and S. Fennimore. 2005. Microbial populations and enzyme activities in soils fumigated with methyl bromide alternatives. Soil Sci. Soc. Am. J. 69: 1987-1990.

37- Triky-Dotan, S., M. Austerweil, B. Steiner, Y. Peretz-Alon, J. Katan and A. Gamliel. 2009. Accelerated degradation of metam-sodium in soil and consequences for root-disease management. Phytopathology. 99: 362-368.

38- Virtue, J.G., C. Dedear, M.J. Potter and M. Rieger. 2006. Potential use of isothiocyanates in branched broomrape eradication. Weed Management Society of South Australia, Victoria. 629-632.

39- Weaver, S. and C. Tan. 1987. Critical period of weed interference in field-seeded tomatoes and its relation to water stress and shading. Can. J. Plant Sci. 67: 575-583.

40- Weaver, S.E. 1984. Critical period of weed competition in three vegetable crops in relation to management practices. Weed Res. 24: 317-325.

41- Zhang, Y., K. Spokas and D. Wang. 2005. Degradation of methyl isothiocyanate and chloropicrin in forest nursery soils. J. Environ. Qual. 34: 1566.

42- Zheng, W., S.R. Yates, S.K. Papiernik and J. Nunez. 2006. Conversion of metam sodium and emission of fumigant from soil columns. Atmos Environ. 40: 7046-7056.