بررسی ارتباط بین میزان پوترسین و هیستامین با جمعیت باکتری‌های مزوفیل هوازی و سایکروتروف‌‌ها در قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) عرضه شده در شیراز

الموضوعات :

علی قربانی رنجبری ¹ (دانشجوی دکتری تخصصی، گروه بیوتکنولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران دانشگاه آزاد اسلامی، واحد کازرون، باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، کازون، ایران)
رزا اکرمی ² (دانشگاه آزاد اسلامی، واحد سنندج، باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، سنندج، ایران)
رضا شریفی راینی ³ (دانشگاه آزاد اسلامی، واحد کازرون، باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، کازون، ایران)

تاريخ الإرسال : 04 الأربعاء , رجب, 1439 تاريخ التأكيد : 04 الأربعاء , رجب, 1439 تاريخ الإصدار : 10 الأحد , صفر, 1437

الکلمات المفتاحية: شیراز, بار میکروبی, قزل‌آلای رنگین‌کمان, هیستامین, پوترسین,

ملخص المقالة :

آمین‌های بیوژن مولکول‌های کوچک آلی با ساختار آروماتیک و هیدروسیکلیک می‌باشند. این ترکیبات توسط آنزیم‌های دکربوکسیلاز باکتریایی از اسیدآمینه آزاد مواد غذایی شکل می‌گیرند. هدف مطالعه حاضر بررسی امکان استفاده از پوترسین و هیستامین به‌عنوان شاخص مناسب جهت ارزیابی تازگی ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان بود. برای این منظور غلظت‌های هیستامین و پوترسین ماهیان نگه‌داری شده در یخ برای دوره 18روزه و با فواصل زمانی 3 روزه به‌وسیله دستگاه HPLCتعیین گردید. در این بررسی هیستامین در اولین و سومین روز نگهداری تشخیص داده نشد؛ اما پوترسین در روز 3 به 03/0±30/1 میکروگرم در گرم رسید. غلضت اولیه هیستامین و پوترسین به‌ترتیب 7/0 و3/1 میکروگرم در گرم بود و در انتهای دوره به‌ترتیب به 5/13 و 18 میکروگرم در گرم رسید که به لحاظ آماری معنی‌دار (05/0>p) بود. طبق یافته‌های مطالعه، بین جمعیت باکتری‌های مزوفیل و هیستامین و نیز بین جمعت باکتریاهای سایکروتروف و مقدار پوترسین رابطه معنی‌داری (05/0>p) وجود داشت (05/0>p). بنابراین تغییرات سطوح پوترسین و هیستامین می‌تواند شاخص مناسبی برای ارزیابی تازگی ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان باشد.

المصادر:

• Bjeldanes, L.F., Shutz, D.E. and Morris, M.M. (1978). Etiology ofscombroid poisoning Fcadaverine potentiation of histamine toxicity in guinea pigs. Food and Cosmetics Toxicology, 16: 157-162.


• Chytiri, S., paleologos, E., Savvaidis, I.N. and Kontominas, M.G. (2004). Relation of biogenic amines with microbial and sensory changes of whole and filleted freshwater Rainbow trout (Onchorynchus mykiss) stored on ice. Journal of Food Protection, 67: 960-965.


• Dawood A.A., Karkalas J., Roy, R.N. and Williams, C.S. (1988). The occurrence of non-volatile amines in chilled-stored Rainbow trout. Food Chemistry, 27: 33-45.


• Daher, N.S. and Simard, R.E. (1985). Putrefactive amine changes in relation to microbial counts of ground beef during storage. Journal of Food Protection, 48: 54-58.


• Eitenmiller, R., Orr, J. and Wallis, W. (1980). Histamine formation in fish: microbiological and biochemical condition. From Chemistry and Biochemistry of Marine food Products, Publisher- AVI, USA.


• Frank, H.A., Yoshinaga, D.H. and Nip, W.K. (1981). Histamine formation and honeycombing during decomposition and honeycombing during decomposition of skipjack tuna, Katsuwonus pelanis, at elevated temperatures, Marine Fisheries Reviews, 43: 9-14.


• Fernandez-Salguero, J. and Mackie, I.M. (1987). Comparative rates of spoilage of fillets and whole fish during storage of haddock (Melanogrammes aegiefinus) and herring (Clupea herengus) as determined by the formation of non-volatile amines. International Journal of Food Science & Technology, 22: 385-390.


• Ghorbani Ranjbary, A., Ghorbani Ranjbary, N., Golchin meneshadi, A. and Ghorbani Ranjbary, Z. (2014). Study of the changes in microbial load, putrescine and histamine in muscles of Otolithes ruber during storage in ice, Journal Management, 1: 1-7.


• Krizek, M., Vorlova, L., Lukasova, J. and Cupakova, S. (2004). Biogenic amines in vacuum-packed and non-vacuum- packed flesh of carp (Cyprinus carpio) stored at different temperatures. Food Chemistry, 88: 185-191.


• Love, R.M. (1980). The Chemical Biology of Fishes. Histidine Vol. 2, San Franciso, pp: 380-385.


• Mitz, J.L. and Karmas, E. (1978). Chemical quality index of canned tuna as determined by high pressure liquid chromatography. Journal of Food Science, 42: 155-158.


• Ozogul, Y., Ozogul, F. and Gökbulut, C. (2006). Quality assessment of wild European Eel (Anguilla Anguilla) stored in ice. Food Chemistry, 95: 458-465.


• Taylor, S.L. and Sumner, S.S. (1986). Determination of histamine, cadaverine and putrescine. In: seafood quality determination (D.E. Kramer and J. Liston Eds.). Proceedings of an International Symposium. Elsevier Science Publishers, New York, pp. 90-94.


• Taylor, S.L. (1986). Histamine Food Poisoning: toxicology and clinical aspects. Toxicology, 17: 91-117.


• Taylor, S.L. and Sumner, S.S. (1987). Determination of histamine, putrescine and cadaverine. (Kramer, D.E. & Liston, J. Eds.) Seafood Quality Determination. Elsevier Scince Publishers, Amsterdam, Nethrlands, pp. 50-61.


• Veciana-Nogues, M.T., Marine-Font, A. and Vidal-Carou, M.C. (1997). Biogenic amines as hygienic quality indicators of tuna. Relationships with microbial counts, ATP-related compounds, volatile amines, and organoleptic changes. Journal of Agriculture and Food Chemistry, 45: 2036-2041.


• Yoshinaga, D.H. and Frank, H.A. (1982). Histamineproducing bacteria in decomposing skipjack tuna (Katsuwonus pelamis). Appl. Environ. Microbiology, 44: 447- 452.


• Yamanaka, H. (1989). Changes in polymines and amino aside in scallop adductor muscle during storge. Journal of Food Science, 54: 1113-1115.