تأثیر مکمل تریپتوفان در جیره‌های با کمبود پروتئین بر عملکرد، توسعه دستگاه گوارش و پاسخ‌های ایمنی در جوجه‌های گوشتی

Subject Areas : Camel

م. فاطمی ¹ , م. طغیانی ²

1 - Department of Animal Science, Isfahan (Khorasgan) Branch, Islamic Azad University, Isfahan, Iran
2 - Department of Animal Science, Isfahan (Khorasgan) Branch, Islamic Azad University, Isfahan, Iran

Received: 2016-08-09 Accepted : 2016-12-15 Published : 2018-03-01

Keywords: عملکرد, ایمنی, جوجه گوشتی, دستگاه گوارش, تریپتوفان,

Abstract :

تحقیق حاضر به منظور بررسی تأثیر مکمل کردن تریپتوفان در جیره‌های با کمبود پروتئین خام بر عملکرد، توسعه دستگاه گوارش و پاسخ‌های ایمنی در جوجه‌های گوشتی انجام شد. بدین منظور تعداد 420 قطعه جوجه گوشتی یکروزه (راس 308) در میان 6 تیمار با 5 تکرار و در قالب طرح کاملاً تصادفی توزیع شدند. تیمارهای آزمایشی عبارتند از: 1) جیره شاهد (CTL) (جیره بر اساس نیاز توصیه شده کاتالوگ راس 2014 تنظیم شد)، 2) جیره شاهد + 15/0 درصد تریپتوفان، 3) جیره با کاهش سطح پروتئین خام 1 (LCP1) (10 درصد پروتئین کمتر از نیاز توصیه شده راس 2014)، 4) LCP1 + 15/0 درصد تریپتوفان، 5) جیره با کاهش سطح پروتئین خام 2 (LCP2) (20 درصد پروتئین کمتر از نیاز توصیه شده راس 2014) و 6) LCP2 + 15/0 درصد تریپتوفان. وزن بدن، مصرف خوراک روزانه و ضریب تبدیل جوجه‌ها در دوره‌های مختلف آزمایش مورد ارزیابی قرار گرفت. اندام‌های هضمی در روز 28 و انتهای آزمایش مورد ارزیابی قرار گرفتند. ریخت‌شناسی روده کوچک در روز 28 آزمایش بررسی شد. تست ترس در روز پایانی آزمایش انجام گرفت. جوجه‌های دریافت‌کننده جیره‌های با کاهش سطح پروتئین خام، وزن بدن و افزایش وزن روزانه پایین‌تری در انتهای دوره آغازین داشتند (05/0>P). مکمل نمودن تریپتوفان در جیره‌های LCP1 کاهش عملکرد رشد آنها را جبران نمود (05/0>P) اما تأثیری پس از افزودن به جیره‌های LCP2 نداشت. چربی محوطه شکمی در جوجه‌های دریافت‌کننده جیره‌های + Trp تمایل به کاهش نشان داد. جوجه‌های دریافت‌کننده جیره LCP2 در ژوژنوم و ایلئوم عمق کریپت بیشتر و نسبت طول پرز به عمق کریپت کمتری در مقایسه با گروه شاهد داشتند (05/0>P). تغذیه جوجه‌ها با جیره‌های LCP2 وLCP2  + 15/0 درصد تریپتوفان نسبت هتروفیل به لنفوسیت را در جوجه‌های گوشتی افزایش داد در حالیکه تأثیری بر طول زمان تست ترس نداشت. به طور کلی، مکمل نمودن تریپتوفان در جیره‌های LCP1 کاهش رشد جوجه‌های گوشتی را در مقایسه با جوجه‌های تغذیه شده با جیره‌های کم پروتئین کاهش داد.

References:

Abdukalykova S. and Ruiz-Feria S. (2006). Arginine and vitamin eimprove the cellular and humoral immune response of broiler chickens. Int. J. Poult. Sci. 5, 121-127.

Akiba Y., Othani H., Saitoh S., Ohkawara H., Takakashi H., Horiguchi M., Gotoh K. (1988). L-Trp improves egg production rate and alleviates fatty liver in laying hens. Pp. 1034-1035 in Proc. 13 World’s Poult. Congr. Nagoya, Japan.

Ale Saheb Fosoul S.S., Toghyani M., Gheisari A., Tabeidiyan S.A., Mohammadrezaei M. and Azarfar A. (2016). Performance, immunity, and physiological responses of broilers to dietary energy and protein sequential variations. Poult. Sci. 95, 2068-2080.

Aviagen. (2009). Ross 308: Broiler Nutrition Specification. Aviagen Ltd., Newbridge, Midlothian, Scotland, UK.

Baker D.H., Allen N.K. and Kleiss A.J. (1973). Efficiency of tryptophan as a niacin precursor in the young chick. J. Anim. Sci. 36, 299-302.

Bregendahl K., Sell J.L. and Zimmerman D.R. (2002). Effect of low-protein diets on growth performance and body composition of broiler chicks. Poult. Sci. 81, 1156-1167.

Campo J.L. and Redondo A. (1996). Tonic immobility reaction and heterophil to lymphocyte ratio in hens from three Spanish breeds laying pink eggshells. Poult. Sci. 75, 155-159.

Choct M. (2009). Managing gut health through nutrition. Br. Poult. Sci. 50, 9-15.

Corzo A., Kidd M.T., Thaxton J.P. and Kerr B.J. (2005a). Dietary tryptophan effects on growth and stress responses of male broiler chicks. Br. Poult. Sci. 46, 478-484.

Corzo A., Moran E.T., Hoehler D. and Lemmell A. (2005b). Dietary tryptophan need of broiler males from forty-two to fifty-six days of age. Poult. Sci. 84, 226-231.

Emadi M., Kaveh K., Jahanshiri F., Hair-Bejo M., Ideris A. and Alimon A.R. (2010). Dietary tryptophan effects on growth performance and blood parameters in broiler chicks. J. Anim. Vet. Adv. 9, 700-704.

Ferguson N.S., Gates R.S., Taraba J.L., Cantor A.H., Pescatore A.J., Straw M.L., Ford M.J. and Burnham D.J. (1998). The effect of dietary protein and phosphorus on ammonia concentration and litter composition in broilers. Poult. Sci. 77, 1085-1093.

Gross W.B. and Siegel H.S. (1983). Evaluation of the heterophil/lymphocyte ratio as a measure of stress in chickens. Avian Dis. 27, 972-979.

Han Y., Suzuki H. and Baker D.H. (1991). Histidine and tryptophan requirement of growing chicks. Poult. Sci. 70, 2148-2153.

Han Y., Suzuki H., Parsons C.M. and Baker D.H. (1992). Amino acid fortification of a low-protein corn and soybean meal diet for chicks. Poult. Sci. 71, 1168-1178.

Incharoen T., Yamauchi K., Erikawa T. and Gotoh H. (2010). Histology of intestinal villi and epithelial cells in chickens fed low protein or low fat diets. Italian J. Anim. Sci. 9, 429-434.

Jones R.B. and Faure J.M. (1981). Sex and strain comparisons of tonic immobility (righting time) in the domestic fowl and the effects of various methods of induction. Behav. Processes. 6, 47-55.

Laudadio V., Passantino L., Perillo A., Lopresti G., Passantino A., Khan R.U. and Tufarelli V. (2012). Productive performance and histological features of intestinal mucosa of broiler chickens fed different dietary protein levels. Poult. Sci. 91, 265-270.

Lucas A.M. and Jamroz C. (1961). Atlas of Avian Hematology. Agriculture Monograph. United States Department of Agriculture, Washington, D.C., USA.

Namroud N.F., Shivazad M. and Zaghari M. (2008). Effects of fortifying low crude protein diet with crystalline amino acids on performance, blood ammonia level, and excreta characteristics of broiler chicks. Poult. Sci. 87, 2250-2258.

Parr J.F. and Summers J.D. (1991). The effect of minimizing amino acid excesses in broiler diets. Poult. Sci. 70, 1540-1549.

Rogers S.R. and Pesti G.M. (1990). The influence of dietary tryptophan on broiler chick growth and lipid metabolism as mediated by dietary protein levels. Poult. Sci. 69, 746-756.

Rosa A.P., Pesti G.M., Edwards H.M. and Bakalli R. (2001). Tryptophan requirements of different broiler genotypes. Poult. Sci. 80, 1718-1722.

SAS Institute. (2004). SAS^®/STAT Software, Release 9.2. SAS Institute, Inc., Cary, NC. USA.

Schiffer M., Chang C.H. and Stevens F.J. (1992). The function of tryptophan residues in membrane proteins. Protein Eng. 5, 213-214.

Shan A.S., Sterling K.G., Pesti G.M., Bakalli R.I., Driver J.P. and Tejedor A.A. (2003). The influence of temperature on the threonine and tryptophan requirements of young broiler chicks. Poult. Sci. 82, 1154-1162.

Shea-Moore M.M., Thomas O.P. and Mench J.O.Y.A. (1996). Decreases in aggression in tryptophan-supplemented broiler breeder males are not due to increases in blood niacin levels. Poult. Sci. 75, 370-374.

Si J., Fritts C.A., Waldroup P.W. and Burnham D.J. (2004). Effects of tryptophan to large neutral amino acid ratios and overall amino acid levels on utilization of diets low in crude protein by broilers. J. Appl. Poult. Res. 13, 570-578.

Smith N.K. and Waldroup P.W. (1988). Estimation of the tryptophan requirement of male broiler chickens. Poult. Sci. 67, 1174-1177.

Steinhart H. and Kirchgessner M. (1984). Investigations on the requirement of tryptophan for broilers. Arch. Geflügelk. 48, 150-155.

Waldroup P.W., Jiang Q. and Fritts C.A. (2005). Effects of glycine and threonine supplementation on performance of broiler chicks fed diets low in crude protein. Int. J. Poult. Sci. 4, 250-257.

Wegmann T.G. and Smithies O. (1966). A simple hemagglutination system requiring small amounts of red cells and antibodies. Transfusion. 6, 67-73.

Wykes L.J., Fiorotto M., Burrin D.G., Del Rosario M., Frazer M.E., Pond W.G. and Jahoor F. (1996). Chronic low protein intake reduces tissue protein synthesis in a pig model of protein malnutrition. J. Nutr. 126, 1481-1488.

Yamazaki M., Murakami H., Nakashima K., Abe H. and Takemasa M. (2006). Effects of excess essential amino acids in low protein diet on abdominal fat deposition and nitrogen excretion of the broiler chicks. J. Poult. Sci. 43, 150-155.