پاسخ‌های ایمنی و پاسخ‌های برخی از متابولیت‌های خون به مکمل ریشه شیرین بیان افزوده شده در جیره گوساله‌های ماده هولشتاین

Subject Areas : Camel

R. Sajjadi ¹ , A.A. Solati ² , M. Khodaei Motlagh ³ , M. Kazemi Bonchenari ⁴

1 - Department of animal science, Saveh Branch, Islamic Azad University, Saveh, Iran
2 - Department of animal science, Saveh Branch, Islamic Azad University, Saveh, Iran
3 - Department of animal science, Faculty of Agriculture and Natural Resources, Arak University, Arak, Iran
4 - Department of animal science, Faculty of Agriculture and Natural Resources, Arak University, Arak, Iran

Received: 2013-07-27 Accepted : 2013-10-30 Published : 2014-09-01

Keywords: شیرین بیان, فراسنجه‌های خونی, گوساله هولشتاین, پاسخ‌های ایمنی,

Abstract :

در دهه اخیر گیاهان دارویی متفاوتی در تغذیه دام و طیور مورد استفاده قرار گرفته است. به نظر می‌رسد امکان جایگزینی برخی از گیاهان دارویی به جای آنتی‌بیوتیک‌های وسیع الطیف وجود دارد. ریشه شیرین بیان یک گیاه دارویی محسوب می‌شود که در مطالعات متفاوتی مورد استفاده قرار گرفته است. در مطالعه حاضر تأثیر افزودن ریشه شیرین بیان بر عملکرد و شاخص‌های انرژی (گلوکز، اسیدهای چرب غیر استریفه و بتاهیدروکسی بوتیرات) و عملکرد سیستم ایمنی (ایمنوگلوبین کل، ایمنوگلوبین G و ایمنوگلوبین A) گوساله‌های ماده هولشتاین مورد بررسی قرار گرفت. تعداد 14 رأس گوساله ماده با میانگین وزن 5/85 کیلوگرم در قالب طرح کاملاً تصادفی و در 2 تیمار قرار گرفتند (7 رأس گوساله در هر تیمار). تیمار شاهد به عنوان تیمار C در نظر گرفته شد و تیماری که مکمل شیرین بیان دریافت کرده بود به عنوانL  در نظر گرفته شد. آزمایش 10 هفته در نظر گرفته شد. هفته اول به عنوان دوره عادت دهی در نظر گرفته شد. مصرف خوراک به صورت روزانه بررسی شد و نمونه خون دو بار در طول آزمایش اندازه‌گیری شد. نتایج نشان داد که میانگین مصرف ماده خشک برابر 1790 و1860 گرم در روز برای تیمارهای C و L بود (05/0<P). غلظت اسیدهای چرب استریفه نشده در بین دو تیمار تفاوت معنی‌داری نشان داد (05/0P<). غلظت ایمنوگلوبین A تفاوت معنی‌داری نشان نداد اما غلظت کل ایمنوگلوبین‌ها و ایمنوگلوبین G تفاوت معنی‌داری در بین دو تیمار نشان دادند (05/0P<). غلظت کل ایمنوگلوبین‌ها برابر 1/150 و 2/138 میلی‌گرم در دسی‌لیتر برای تیمارهای C وL  بود که نشان دهنده بالاتر بودن این فراسنجه تا حدود 31 درصد با استفاده مکمل در برابر تیمار شاهد بود. به طور خلاصه نتیجه‌گیری شد با وجودی که مکمل شیرین بیان عملکرد دامها را تحت تأثیر قرار ندادده بود اما این مکمل توانست وضعیت انرژی در گوساله‌ها را بهبود داده و همچنین وضعیت ایمنی را در این دام‌ها بهبود دهد.

References:

Ahn G., Hwang I., Park E., Kim J., Jeon Y.J., Lee J., WooPark J., and Jee Y. (2008). Immunomodulatory effects of an enzymatic extract from Ecklonia cava on murine splenocytes. Marine Biotechnol. 10, 278-289.
Akamatsu H., Kumaro J., Asada Y. and Niwa Y. (1991). Mechanism of anti-inflammatory action of glycyrrhizin: effect on neutrophil functions including reactive oxygen species generation. Plan. Medica. 57, 119-121.
Allen M.S. (2000). Effects of diet on short-term regulation of feed intake by lactating dairy cattle. J. Dairy Sci. 83, 1598-1624.
AOAC. (2000). Official Methods of Analysis. Vol. I. 15^th ed. Association of Official Analytical Chemists,Arlington,VA.
Baker M.E. (1994). Licorice and enzymes other than 11 betahydroxysteroid dehydrogenase: an evolutionary perspective. Steroids. 59, 136-141.
Bernardi M.D., Intino P.E. and Trevisani F. (1994). Effects of prolonged ingestion of graded doses of licorice by healthy volunteers. Life Sci. 55, 863-872.
Brzezinska Slebodzinska E., Barwicka V. and Slebodzinski A.B. (1998). Growth hormone administration alters levels of antioxidative defense in erythrocytes and plasma. Pp 64-65 in Proc. 3^th Conf. Farm Anim. Endocrinology, Brusseis. BASE.
Chavali S.R., Francis T. and Campbell J.B. (1987). An in vitro study of immunomodulatory effects of some saponins. Int. J. Immunopharmacol. 9, 675-676.
Craig W.J. (1999). Health promoting properties of common herbs. Am. J. Clin. Nutr. 70, 491-499.
Hatano T., Yasuhara T., Miyamoto K. and Okuda T. (1988). Anti-human immunodeficiency virus phenolics from licorice. Chem. Pharm. Bull. 36, 2286-2288.
Hidiroglou M., Batra T.R. and Ivan M. (1995). Effects of supplemental vitamin E and C on the immune responses of calves. J. Dariy Sci. 78, 1578-1583.
Katamaya M., Fukada T., Okamura T., Suzuki E., Tamura K., Shimizu Y., SudaY. and Suzuki K. (2011). Effect of dietary addition of seaweed and licorice on the immune performance of pigs. Anim. Sci. J. 82, 274-281.
Kim J.K., Oh S.M., Kwon H.S., Oh Y.S., Lim S.S. and Shin H.K. (2006). Anti-inflammatory effect of roasted licorice extracts on lipopolysaccharide-induced inflammatory responses in murine macrophages. Biochem. Biophysic. Res. Com. 345, 1215-1223.
Kim M.E., Kim H.K., Kim D.H., Yoon J.H. and Lee J.S. (2013). 18ß-Glycyrrhetinic acid from licorice root impairs dendritic cells maturation and Th1 immune responses. Immunopharmacol. Immunotoxical. 35, 329-35.
Kinoshita T., Tamura Y. and Mizutani K. (2005). The isolation and structure elucidation of minor isoflavonoids from licorice of Glycyrrhiza glabra origin. Chem. Pharm. Bull. 53, 847-849.
Latif S.A., Conca T.J. and Morris D.J. (1990). The effects of the licorice derivative, glycyrrhetinic acid, on hepatic 3 alpha and 3 betahydroxysteroid dehydrogenases and 5 alpha and 5 beta-reductase pathways of metabolism of aldosterone in male rats. Steroids. 55, 52-58.
Nassiri Asl M. and Hosseinzadeh H. (2008). Review of pharmacological effects of glycyrrhiza sp. and its bioactive compounds. Phytothe. Res. 22, 709-724.
Nara I.Z. (1984). The role of interferon-gamma (IFN-gamma) producing cells in clinical immunology. Chem. Abst. 35, 424.
Okda F.A., Yassein S., Ahmed A.R., Soufy H. and Nasr S.M. (2013). Some haematological and biochemical investigations on duck virus hepatitis following administration of glycyrrhizin.ISRN. Pharmacol. 2013, 1-10.
Pollock J.M., Rowan T.G., Dixon J.B. and Carter S.D. (1994). Level of nutrition and age at weaning: effects on humoral immunity in young calves. Br. J. Nutr. 71, 239-248.
SAS Institute. (2000). SAS/STAT User’s Guide, Version 8. SAS Institute Inc., Cary, NC.
Shinada M., Azuma M., Sazaki H., Yoshida I., Suzutani T. and Sakuma T. (1986). Enhancement of interferon gamma production in glycyrrhizin-treated human peripheral lymphocytes in response to concanavalin A and to surface antigen of hepatitis B virus. Proc. Soc. Exp. Bio. Med. 181, 205-206.
Sun H.X. and Pan H.J. (2006). Immunological adjuvant effect of Glycyrrhiza uralensis saponins on the immune responses to ovalbumin in mice. Vaccine. 24, 1914-1920.
Suzuki K., Onodera W., Kumagai Y., Kachi T., Shimizu Y., Yoshino J., Suda Y. and Kobayashi J. (2009). Effects of dietary seaweed, b-glucan and yeast on immunity and growth traits in growing pigs. Japanese J. Zootech. Sci. 80, 27-34.
Ultee A., Slump R.A., Steging G. and Smid E.J. (2000). Antimicrobial activity of carvacrol toward B. Cereus on rice. J. Food Prod. 63, 620-624.
Utsunomiya T., Kobayashi M., Pollard R.B. and Suzuki F. (1997). Glycyrrhizin, an active component of licorice roots, reduces morbidity and mortality of mice infected with lethal doses of influenza virus. Antimicrob. Agent. Chemother. 41, 551-556.