اثرات تجویز مهارکننده و تحریک‌کننده‌ی سنتز نیتریک اکساید بر ضخامت پرده شفاف (زونا پلوسیدا) فولیکول‌های تخمدان در موش‌های صحرایی باردار

محورهای موضوعی : فصلنامه زیست شناسی جانوری

سید محمد حسین نوری موگهی ¹ , شبنم موثقی ² , عطارد سادات مصطفوی نیا ³ , مهناز نوری ⁴ , زهرا نادیا شریفی ⁵

1 - گروه علوم تشریح و علوم اعصاب شناختی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی آزاد اسلامی، تهران، ایران|گروه علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
2 - گروه علوم تشریح و علوم اعصاب شناختی، واحد علوم پزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
3 - گروه علوم تشریح و علوم اعصاب شناختی، واحد علوم پزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
4 - گروه زنان و مامایی، واحد شاهرود، دانشگاه آزاد اسلامی، شاهرود، ایران
5 - گروه علوم تشریح و علوم اعصاب شناختی، واحد علوم پزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران

تاریخ دریافت : 1401/05/17 تاریخ پذیرش : 1401/08/18 تاریخ انتشار : 1402/03/01

کلید واژه: موش صحرایی, نیتریک اکساید, ال-آرژنین, ال-نیم, پرده شفاف,

چکیده مقاله :

نیتریک ‌اکساید، در بسیاری از اندام‌های بدن پستانداران تولید شده و اثرات فیزیولوژیک و پاتولوژیک فراوانی دارد. پیش‌ساز تولید آن در بدن نام ال-آرژنین و سنتز آن توسط آنزیم نیتریک ‌اکساید سنتتاز (NOS) بوده و مهار‌کننده آن ترکیب ال-نیترو آرژینین متیل استر (L-NAME) می‌باشد. در تحقیق نجربی حاضر به بررسی اثرات این مواد بر تغییر ضخامت پرده شفاف (زونا پلوسیدا) فولیکول‌های تخمدان در موش‌های صحرایی باردار می‎پردازیم. 32 سر موش صحرایی بالغ نژاد ویستار، با وزن 250-200 گرم و سن متوسط هشت هفته انتخاب و به 4 گروه 8 تایی تقسیم‎بندی شدند: به جز گروه کنترل، بقیه گروه‌های باردار به ترتیب ال-آرژنین 200 میلی گرم/کیلوگرم، ال-نیم 20 میلی گرم/کیلوگرم و مخلوط دو ماده مذکور با همان دوزهای مشابه طی سه روز متوالی دریافت کردند. بعد از تزریق داخل صفاقی، روز 18 بارداری ابتدا موش‎ها با اتر بی‎هوش و با انجام لاپاراتومی، تخمدان‎ها خارج و پس از تهیه مقاطع بافتی، ضخامت پرده شفاف با استفاده از نرم افزارImage tools III اندازه‎گیری شد. ضخامت پرده شفاف به صورت معنی‎داری در گروه ال-آرژنین کاهش نشان داد (05/0 p <)، ولی اختلاف معنی‎داری بین گروه کنترل با سایر گروه‌ها و نیز بین گروه‌های ال-نیم و ال-نیم + ال-آرژنین مشاهده نشد. نیتریک اکساید می‎تواند به عنوان یک عامل مخرب در شکل‎گیری پرده شفاف مطرح و همچنین سبب اختلال در عملکرد فولیکول‌های تخمدان شود.

چکیده انگلیسی:

Nitric oxide is a short-lived mediator which produced in different mammalian cell types. Nitric oxide synthesizes (NOSs) are a family of complex enzymes that catalyze the oxidation of L-Arginine to form Nitric Oxide. Overproduction of nitric oxide may imply in the pathogenesis of several immune diseases. The present study demonstrates the potential role of nitric oxide in zona pellucida thickness. This study was performed on 8 weeks pregnant Wistar rats (n=32). To study the impact of Nitric Oxide on zona pellucida thickness four experimental designs were investigated. Control group, 200 mg/kg L-Arginine, 20 mg/kg L-NAME and a combination of L-Arginine, and L-NAME. Ovary removal via laparotomy was performed 13 days after intraperitoneal injection. Zona pellucida thickness was investigated by Image tools III quantitative technique. Based on our findings, L-Arginine causes a significant decrease in zona pellucida thickness (p ≤ 0.05). No discrepancy was detected in zona pellucida thickness between the other experimental groups and the control group. The results support the hypothesis that destructive effects on ovary and zona pellucida formation can be mediated by the overproduction of nitric oxide.

منابع و مأخذ:

1. Akkoyunlu G., Üstünel İ., Demir R., 2007. The distribution of transglutaminase in the rat oocytes and embryos. Theriogenology, 68(6):834-841.


2. Bian, K., Doursout, M.F. and Murad, F., 2008. Vascular system: role of nitric oxide in cardiovascular diseases. The Journal of Clinical Hypertension, 10(4):304-310.


3. Blashkiv T.V., Korniichuk A.N., Voznesenskaya T.Y., Pornichenko A.G. 2001. Role of nitric oxide in ovulation, meiotic maturation of oocytes, and implantation in mice. Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 132(5):1034-1036.


4. Blashkiv T.V. 2003. Effect of NO on meiotic maturation of the oocytes in mice in vitro. Fiziolohichnyi Zhurnal, 49(1):100-103.


5. Bu S., Xia G., Tao Y., Lei L., Zhou B. 2003. Dual effects of nitric oxide on meiotic maturation of mouse cumulus cell-enclosed oocytes in vitro. Molecular and Cellular Endocrinology, 207(1-2):21-30.


6. Calabrese V., Mancuso C., Calvani M., Rizzarelli E., Butterfield D.A. 2007. A. STELLA. Nitric oxide in the central nervous system: neuroprotection versus neurotoxicity. Nature Reviews Neuroscience, 8:766-775.


7. Girouard H., Wang G., Gallo E.F., Anrather J., Zhou P., Pickel V.M., Iadecola C. 2009. NMDA receptor activation increases free radical production through nitric oxide and NOX2. Journal of Neuroscience, 29(8):2545-2552.


8. Goud A.P., Goud P.T., Diamond M.P., Abu-Soud H.M. 2005. Nitric oxide delays oocyte aging. Biochemistry, 44(34):11361-11368.


9. Goud P.T., Goud A.P., Joshi N., Puscheck E., Diamond M.P., Abu-Soud H.M., 2014. Dynamics of nitric oxide, altered follicular microenvironment, and oocyte quality in women with endometriosis. Fertility and Sterility, 102(1):151-15


10. Hattori M.A., Takesue K., Kato Y., Fujihara N. 2001. Expression of endothelial nitric oxide synthase in the porcine oocyte and its possible function. Molecular and Cellular Biochemistry, 219(1):121-126.


11. Huo L.J., Liang C.G., Yu L.Z., Zhong ZS, Yang Z.M., Fan H.Y., Chen D.Y., Sun Q.Y., 2005.Inducible nitric oxide synthase-derived nitric oxide regulates germinal vesicle breakdown and first polar body emission in the mouse oocyte. Reproduction, 129(4):403-409.


12. Majhi C.R., Khan S., Leo M.D.M., Manimaran A., Sankar P., Sarkar S.N. 2011. Effects of acetaminophen on reactive oxygen species and nitric oxide redox signaling in kidney of arsenic-exposed rats. Food and Chemical Toxicology, 49(4):974-982.


13. Mitchell L.M., Kennedy C.R., Hartshorne G.M. 2002. Effects of varying gonadotrophin dose and timing on antrum formation and ovulation efficiency of mouse follicles in vitro. Human Reproduction, 17(5):1181-1188.


14. Mondillo, C., Pagotto, R.M., Piotrkowski, B., Reche, C.G., Patrignani, Z.J., Cymeryng, C.B. and Pignataro, O.P., 2009. Involvement of nitric oxide synthase in the mechanism of histamine-induced inhibition of Leydig cell steroidogenesis via histamine receptor subtypes in Sprague-Dawley rats. Biology of Reproduction, 80(1):144-152.


15. Nakamura Y., Yamagata Y., Sugino, N., Takayama H., Kato H. 2002. Nitric oxide inhibits oocyte meiotic maturation. Biology of Reproduction, 67(5):1588-1592.


16. Nemade R.V., Carrette O., Larsen W.J., Markoff E. 2002. Involvement of nitric oxide and the ovarian blood follicle barrier in murine follicular cyst development. Fertility and Sterility, 78(6):1301-1308.


17. Nishikimi A., Matsukawa T., Hoshino K., Ikeda S., Kira Y., Sato E.F., Inoue M., Yamada M. 2001. Localization of nitric oxide synthase activity in unfertilized oocytes and fertilized embryos during preimplantation development in mice. ReproductionCambridge, 122(6):957-963.


18. Noori Moogahi S.M.H., Sharifi Z.N., Movaseghi S., Mostafavinia A. 2022. Investigation of Excitatory and Inhibitory Effects of L-Arginine and L-NAME on the thickness of the cortex and medulla of Thymus in Pregnant Rats. Developmental Biology, 14(1):49-54.


19. Noori-Mugahi, S.M.H. and Moghani-Ghoroghi, F., 2015. Morphometry of Rat Jejunal Enterocytes Number and Height after L-Arginine and L-NAME Administration. Zahedan Journal of Research in Medical Sciences, 17(2).


20. Romero-Aguirregomezcorta J., Santa Á.P., García-Vázquez F.A., Coy P., Matas, C. 2014. Nitric oxide synthase (NOS) inhibition during porcine in vitro maturation modifies oocyte protein S-nitrosylation and in vitro fertilization. PLoS One, 9(12):e115044.


21. Stanek A., Gadowska-Cicha A., Gawron K., Wielkoszynski T., Adamek B., Cieslar G., Wiczkowski A., Sieron A., 2008. Role of nitric oxide in physiology and pathology of the gastrointestinal tract. Mini-Reviews in Medicinal Chemistry, 8(14):1549-60.


22. Tao Y., Fu Z., Zhang M., Xia G., Yang J., Xie H. 2004. Immunohisto chemical localization of inducible and endothelial nitric oxide synthase in porcine ovaries and effects of NO on antrum formation and oocyte meiotic maturation. Molecular and Cellular Endocrinology, 222(1-2):93-103.


23. Thomas D.D., Ridnour L.A., Isenberg J.S., Flores-Santana W., Switzer C.H., Donzelli S., Hussain P., Vecoli C., Paolocci N., Ambs S., Colton C.A. 2008. The chemical biology of nitric oxide: implications in cellular signaling. Free Radical Biology and Medicine, 45(1):18-31.


24. Tůmová L., Romar R., Petr J., Sedmíková M. 2013. The effect of protein kinase C activator and nitric oxide donor on oocyte activation and cortical granule exocytosis in porcine eggs. Animal, 7(2):279-286.