بررسی فیتوشیمیایی، آنتی‌اکسیدانی و محتوای فنلی و بیوسنتز نانو ذرات نقره و طلا از عصاره های مختلف اندامهای گیاه .Conocarpus erectus L

محورهای موضوعی : فیتوشیمی

فاطمه گرجیان ¹ (گروه شیمی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه شهید چمران اهواز)
رویا میرزاجانی ² (گروه شیمی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه شهید چمران اهواز)
مریم کلاهی ³ (گروه زیست شناسی، دانشگاه شهید چمران اهواز، ایران)

تاریخ دریافت : 1396/06/28 تاریخ پذیرش : 1397/11/14 تاریخ انتشار : 1398/03/01

کلید واژه: نانوذره, آنتی‌اکسیدان, محتوای فنلی, کنوکارپوس (Conocarpus erectus L.),

چکیده مقاله :

هدف مطالعه حاضر بررسی فیتوشیمیایی ترکیبات موجود در برگ و گل گیاه کنوکارپوس (Conocarpus erectus L.) و تعیین محتوای فنلی و ویژگی‌های آنتی اکسیدانی عصاره‌های مختلف آن می‌باشد. به منظور بررسی فیتوشیمیایی ترکیبات موجود در گیاه کنوکارپوس، عصاره‌ی برگ و گل این گیاه به دو روش سوکسله و خیساندن استخراج گردید. به منظور شناسایی ترکیبات شیمیایی، از آزمون‌های فیتوشیمیایی و دستگاه کروماتوگرافی گازی متصل به طیف نگار جرمی استفاده شد. میزان ترکیبات فنلی و ویژگی‌های آنتی اکسیدانی در عصاره‌‌های برگ و گل مشخص شد، در ادامه قطر نانوذرات طلا و نقره سنتز شده با استفاده از عصاره برگ و گل کنوکارپوس به دو روش سوکسله و خیساندن، اندازه‌گیری شد. در این بررسی نوزده ترکیب شیمیایی با بالاترین درصد فراوانی در عصاره متانولی برگ به روش خیساندن و سوکسله شناسایی شد که در میان اجزای شناسایی شده‌، برخی ترکیبات از جمله استروئیدها در هر‌دو عصاره یافت شدند. مقدار ترکیبات فنولی به میزان بالا مشاهده شد که در این بین عصاره ی گل استخراج شده به روش سوکسله بالاترین میزان ترکیبات فنلی را به خود اختصاص داد. در میان عصاره‌های استخراج شده از گیاه کنوکارپوس، عصاره‌ی گل به دست آمده به روش سوکسله، دارای کمترین IC50 و در نتیجه بالاترین قدرت آنتی اکسیدانی بود. ا وجود ترکیبات شیمیایی مختلف، محتوای فنلی بالا و فعالیت آنتی اکسیدانی مناسب در عصاره کنوکارپوس بیانگر پتانسیل عصاره این گیاه برای استفاده به عنوان یک منبع طبیعی آنتی اکسیدانی، در جهت ساخت نانوذرات و داروها می‌باشد.

چکیده انگلیسی:

The identification of various bioactive compounds, high phenolic content and high antioxidant activity in extracts of Conocarpus erectus reveals the potential application of this plant as a natural source of antioxidant with the capability of synthesizing nanoparticles for medicine. The aim of this study was to examine the phytochemical compounds in the leaves and flowers of Conocarpus erectus L. and to determine the phenolic content and antioxidant properties of these extracts. Conocarpus erectus L leaves and flowers were extracted utilizing the Soxhlet and Maceration extraction methods. Phytochemical compounds present in plant extracts were analyzed by the use of gas chromatography mass spectrometry. The amount of phenolic content and antioxidant activity in leaf and flower extracts were determined, and the gold and silver nanoparticles were synthesized using these extracts. Additionally the diameter of gold and silver nanoparticles synthesized using extracts of the leaves and flowers were measured. 19 chemical compounds were identified that were mainly in methanolic extracts of leaves prepared by Soxhlet extraction. Steroids were detected in both extracts The amount of phenolic compounds was high. In this study, the extract of flower obtained by Soxhlet method had the highest phenolic compounds. Of the plant extracts evaluated, the extracts obtained by the Soxhlet method had the lowest IC50 and thus the highest antioxidant capacity. Extracts were also utilized in the preparation of nanoparticles of gold and silver.

منابع و مأخذ:

 

References

1. Abdel-Hameed, E.S.S., Bazaid, S.A., Sabra, A.N.A., 2013. Protective Effect of Conocarpus erectus extracts on CCl₄-Induced chronic liver injury in Mice. Global Journal Pharmacology, 7(1): 52-60.


2. Abdel-Hameed, E.S.S., Bazaid, S.A., Shohayeb, M.M., 2014. RP-HPLC-UV-ESI-MS phytochemical analysis of fruits of Conocarpus erectus L. Chemical Papers, 68(10): 1358-1367.


3. Adonizio, A. Kong, K.F., Mathee, K., 2008. Inhibition of quorum sensing-controlled virulence factor production in Pseudomonas aeruginosa by South Florida plant extracts. Antimicrobial agents and chemotherapy, 52(1):198–203.


4. Ahmed, S., Ahmad, M.,Swami, B.L., Ikram, S., 2016. A review on plants extract mediated synthesis of silver nanoparticles for antimicrobial applications: A green expertise. Journal of advanced research, 7(1): 17-28.


5. Ayoub, N.A., 2010. trimethoxyellagic acid glucuronide from Conocarpus erectus leaves: isolation, characterization and assay of antioxidant capacity. [Research Support, Non-U S Gov't]. Pharmaceutical biology, 48(3): 328-332.


6. Azwanida, N.N., 2015. A review on the extraction methods use in medicinal plants, principle, strength and limitation. Medicinal and Aromatic Plants,4: 196.


7. Bandeira, A.R.G., 2003. Estudo Fitoqúimico e aAtividade. Biológica de Conocarpus erectus L. (MangueBotão). Recife (PE): Universidade Federal de Pernambuco, 86 p.


8. Bashir, M., Uzair, M., Bashir Ahmad, C.H., 2015. A review of phytochemical and biological studies on Conocarpus erectus (Combretaceae). Pakistan Journal of Pharmaceutical Research, 1(1): 1-8.


9. Bibak, B. Khakshor, A. Kamali, H. Ahmadzadeh Ghavidel, R. Aminimoghadamfaruj, N., 2012 Evaluation of Antibacterial Properties, Phytochemical Contents and Antioxidant Capacities of leaf and stem barks of Uvaria grandiflora Roxb. Journal of North Khorasan University of Medical Sciences, 4(1):113-118.


10. Brewer, M.S., 2011. Natural Antioxidants: Sources, Compounds, Mechanisms of Action, and Potential Applications. Comprehensive reviews in food science and food safety, 10(4): 221-247.


11. Gajjar, P., Pettee, B., Britt, D.W., Huang, W. Johnson, W.P., Anderson, A.J., 2009. Antimicrobial activities of commercial nanoparticles against an environmental soil microbe, Pseudomonas putida KT2440. Journal of Biological Engineering, 3(9): 1754-1611.


12. Khan, A.M., Qureshi, R.A., Ullah, F., Gilani, S.A., Nosheen, A., Sahreen, S., Laghari, M.K., Laghari, M.Y., Hussain, I. and Murad, W., 2011. Phytochemical analysis of selected medicinal plants of Margalla Hills and surroundings. Journal of Medicinal Plants Research, 5(25): 6055-6060.


13. Kuppusamy, P., Yusoff, M.M., Maniam, G.P., Govindan, N., 2016. Biosynthesis of metallic nanoparticles using plant derivatives and their new avenues in pharmacological applications – An updated report. Saudi Pharmaceutical Journal, 24(4): 473-484.


14. Lopes, R.M., Oliveira, T.T., Nagem, T.J., Pinto, A.S., 2000. Flavonóides: farmacologia de flavonoides no control ehiperlipidê micoemanimais experimentais. Biotecnologia Ciência e Desenvolvimento, 3: 18-22.


15. 15.Marinova, D., Ribarova, F., Atanassova, M. 2005. Total phenolics and total flavonoids in Bulgarian fruits and vegetables.Journal of Chemical Technology and Metallurgy, 403:  255-260.


16. Mojab, F., Kamalinejad, M., Ghaderi, N., Vahidipour, H.R. 2003. Phytochemical screening of some species of Iranian plants. Iranian Journal of Pharmaceutical Research, 2(2): 77-82.


17. Nadaf, N.Y., Kanase, S.S. 2016. Biosynthesis of gold nanoparticles by Bacillus marisflavi and its potential in catalytic dye degradation. Arabian Journal of Chemistry, 4:1-9.


18. Nascimento, D.K., Souza, I.A., Oliveira, A.M., Barbosa, M.O., Santana, M.A., Pereira, D.F., Lira, E.C., Vieira, J.R., 2016. Phytochemical screening and acute toxicity of aqueous extract of leaves of Conocarpus erectus Linnaeus in Swiss Albino Mice. Anais da Academia Brasileira de Ciencias, 88 (3): 1431-7.


19. Petrovska, B.B. 2012. Historical review of medicinal plants' usage. Pharmacognosy, 6(11): 1-5.


20. Rafiei, M., Gadgil, A.S., Ghole, V.S., Gore, S.D., Jaafarzadeh, N., Mirkazemi, R. 2009. Assessment of air pollution and its effects on the health status of the workers in beam rolling mills factory (Iran National Steel Industrial Group) fromAhvaz-Iran. Indian journal of occupational and environmental medicine, 13(1): 20-22.


21. Sharma, R.K., Chatterji, S., RaiD, K., Mehta, S., Rai, P.K., Singh, R.K., Watal, G., Sharma, B. 2009. Antioxidant activities and phenolic contents of the aqueous extracts of some Indian medicinal plants. Journal of Medicinal Plants Research, 3(11): 944-948.


22. Shohayeb, M.M, Abdel-Hameed, E.S.S., Bazaid, S.A.2013. Antimicrobial activity of tannins and extracts of different parts of Conocarpus erectus L. International Journal of Pharma and Bio Sciences, 3(2): 544-553.


23. Smith, C.A., Simpson, C.A., Kim, G., Carter, C.J., Feldheim, D.L. 2013. Gastrointestinal bioavailability of 2.0 nm diameter gold nanoparticles. [Research Support, Non-U S Gov't]. American Chemical Society Nano, 7(5): 3991-3996.


24. Ugochukwu, S.C., Uche, A., Ifeanyi, O. 2013. Preliminary phytochemical screening of different solvent extracts of stem bark and roots of Dennetia tripetala G. Baker. Asian Journal of Plant Science and Research, 3(3): 10-13.


25. Yusuf, A.Z., Zakir, A., Shemau, Z., Abdullahi, M., Halima,S.A. 2014. Phytochemical analysis of the methanol leaves extract of Paullinia pinnatalinn. Journal of pharmacognosy and phytotherapy, 6(2):10-6.


26. Zohra, S.F., Meriem, B., Samira, S., Muneer, M.A., 2012. Phytochemical screening and identification of some compoundsfrom Mallow. Journal of Natural Product and Plant Resources, 2 (4):512-516