ارزیابی روش قلمه-پیوند برای تکثیر درختچه زینتی یاس خوشه ای پیوند شده بر روی پایه برگ نو
الموضوعات : مجله گیاهان زینتی
موسي سلگي
1
(گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه اراک، اراک، ایران)
حسین باقری
2
(گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه اراک، اراک، ایران)
محمدسجاد عاشقی
3
(گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه اراک، اراک، ایران)
الکلمات المفتاحية: قلمه-پیوند, پیوند, برگ نو, یاس بنفش, تکثیر,
ملخص المقالة :
یاس بنفش (Syringa vulgaris) درختچه ای با ارزش است که به دلیل داشتن برگ ها و گل های زیبا با رایحه ای مطبوع در مناظر طبیعی مورد استفاده قرار می گیرد. پیوند یاس بنفش بر روی برگ نو (Ligustrum vulgare) به منظور کاهش زمان لازم برای تکثیر و استفاده از فواید پایه مورد ارزیابی قرار گرفت. روش تکثیر قلمه-پیوند یا ریشه زایی و پیوند همزمان یکی از روش های جدید برای تکثیر برخی از گیاهان چوبی است. در این تحقیق برای اولین بار از تکنیک قلمه-پیوند برای تکثیر یاس بنفش استفاده شد. دو روش قلمه-پیوند (نیمانیم و امگا) و سه غلظتIBA (0، 1000 و 2000 میلی گرم در لیتر) مورد ارزیابی قرار گرفت. با توجه به نتایج، قلمه-پیوند به روش نیمانیم به طور معنی داری درصد قلمه-پیوندهای های ریشه دار شده و پیوندک های برگ دار شده را افزایش داد ولی میزان قلمه-پیوندهای خشک شده را نسبت به روش امگا کاهش داد. درصد تشکیل کالوس پایه، درصد پیوندک های برگ دار و وزن تر ریشه و اندام هوایی تولید شده با کاربرد ایندول-3-بوتیریک اسید به طور معنی داری افزایش یافت. بهترین نتایج با 2000 میلی گرم در لیتر به دست آمد. کمترین درصد قلمه-پیوند خشک شده در این تیمار مشاهده شد. همچنین موفقیت نهایی قلمه-پیوند نشان داد که استفاده از روش نیمانیم و IBA بیشترین دست آورد را داشته است. به طور کلی، استفاده از غلظت 200 میلیگرم در لیتر IBA همراه با روش قلمه-پیوند نیمانیم برای تکثیر درختچه زینتی یاس خوشه ای در این تحقیق توصیه می شود.
Babaie H, Zarei H Hemmati K (2014) Propagation of ficus benjamina var. starlight by stenting technique under different concentrations of iba in various times of taking cutting. J Ornamental Plants 4(2): 75-79 (In Persian)
Bean WJ (1921) Ligustrum vulgare Linnaeus, Common Privet. In W. J. Bean, Trees and Shrubs Hardy in the British Isles (3 ed., Vol. 2, p. 29). London: J. Murray.
Bean WJ (1921) Syringa Vulgaris, Linnaeus. Common Lilac. In W. J. Bean, Trees and Shrubs Hardy in the British Isles (3 ed., Vol. 2, p. 572). London: J. Murray.
Brar J, Khehra S (2017) Stenting: A Technique for Rapid Multiplication of Peach. Int J Current Micr. 6(8): 1449-1453.
Cabrera RI (2002) Rose yield, dry matter partitioning and nutrient status responses to rootstock selection. Sci Hort 95: 75-83
Hartmann HT, Kester DE, Davies F (2010) In Plant Propagation, Principles & Practices (p. 647). Englewood Cliffs, New Jersey, NJ, USA: Prentice-Hall Inc. Englewood.
Izadi Z, Zarei H (2014) Evaluation of Propagation of Chinese Hibiscus (Hibiscus rosa-sinensis) through Stenting Method in Response to Different IBA Concentrations and Rootstocks. Amr J Plant Sci 5(13): 1836-1841
Izadi Z, Zarei H, Alizadeh M (2013) Role of grafting technique on the success of stenting propagation of two rose (Rosa sp.) Varieties 4: 41-44.
Jędrzejuk A, Rochala J, Dolega M, Łukaszewska A (2013) Comparison of petal senescence in forced and unforced common lilac flowers during their postharvest life. Acta Physiol Plantarum 35: 1785-176
Karimi HR (2011) Stenting (Cutting And Grafting)-A Technique For Propagating Pomegranate (Punica Granatum L.). J Fruits Ornamental Planr Res 19(2): 73-79
Khalili MR, Nekonam F, Khososi M, Naderi R, Jabarzadeh J (2011) The Effect of indole butyric acid hormone concentration and rootstock on propagation of rose Cv. "Olivia" through stenting technique. 6(4), 15-22.
Ludwig-Müller J (2000) Indole-3-butyric acid in plant growth and development. Plant Growth Reg 32: 219-230
Nazari F, Khosh-Khui M, Salehi H (2009) Growth and flower quality of four Rosa hybrida L. cultivars in response to propagation by stenting or cutting in soilless culture. Sci Hort 119: 302–305
Nowrozi M, Karimi HR, Mirdehghan S.H (2016) Effect of rootstock, scion and grafting method on vegetative propagation of pomegranate. Iranian J Hort Sci 47(2): 337-350 (In Persian)
Ohkawa K (1980) Cutting-grafts as a means to propagate greenhouse roses. Sci Hort 13(2): 191-199
Osborne D, McManus M (2005) In D. Osborne, & M. McManus, Hormones, signals and target cells in plant development (p. 158). Cambridge University Press.
Park Y, Jeong B (2012) Effect of light intensity during stenting propagation on rooting and subsequent growth of two rose cultivars. Flpwers res 20(4): 228−232
Pinghai D, Rongting X (1993) Effect of phenols on survival of walnut grafting. 311, 134-140.
Pourghorban M, Khaghani S, Azadi P, Mirzakhani A, Changizi M (2019) Propagation of Rosa hybrida L. cv. Dolce Vita by stenting and stem cutting methods in response to different concentrations of IBA. Adv Hort Sci 33(1): 105-111
Ramos DE (1998) In D. E. Ramos, Walnut production manual (p. 316). University of California.
Royal Horticultural Society (2008) A-Z Encyclopedia of Garden Plants. Great Britain: Dorling Kindersley Limited.
Solgi M, Shahrjerdi I, Ebadi A (2012) Effect of Scion Genotype, Rootstock Age and Time of Grafting on Success of Soft Grafting Method in Walnut. Acta Hort 940: 119-123
Solgi M, Taghizadeh,M, Bagheri H (2022) Response of black mulberry onto white mulberry rootstock to stenting. Ornamental Hort 28: 78-84
Stanisavljevic M, Mitrovic,M (1997) Effect of variety on successful grafting & development of nursery trees of walnut (Juglans regia L.). Acta Hort 442: 281-284.
Van De Pol,P, BreukelaarA (1982) Stenting of roses; a method for quick propagation by simultaneously cutting and grafting. Sci Hort 17(2): 187-196
Waldenmaier S, Bünemann G (1991) Ex vitro effects in micropropagation of Syringa L. Acta Hort 300
Yeshiwas T, WorkieMA, Alemayehu G (2018) Influence of Indole Butyric Acid (IBA) for Stenting Propagation of Cut Rose. 5(2)
Zhao Y (2010) Auxin biosynthesis and its role in plant development. Ann Rew Plant Biol 61: 49-64
