• الصفحة الرئيسية
  • ارزیابی جنبه های مختلف آنتاگونیستی Pythium oligandrum(Dresch) درکنترل بیولوژیک (Kuhn) Rhizoctonia solani عامل بیماری مرگ گیاهچه چغندرقند در آزمایشگاه

شارک

عنوان URL للمقالة


رقم المقالة : 484 زيارة : 24 الصفحة: 51 - 70

نوع المخطوط: ابحاث

ارزیابی جنبه های مختلف آنتاگونیستی Pythium oligandrum(Dresch) درکنترل بیولوژیک (Kuhn) Rhizoctonia solani عامل بیماری مرگ گیاهچه چغندرقند در آزمایشگاه

الموضوعات : دو فصلنامه تحقیقات بیماریهای گیاهی

فریبرز فرخی 1 (عضو هیات علمی، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی خراسان رضوی، مشهد، ایران)
محمد حاجیان شهری 2 (استادیار پژوهش، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی خراسان رضوی، مشهد، ایران)
محمد سالاری 3 (دانشیار گروه گیاهپزشکی دانشکده کشاورزی دانشگاه زابل، زابل، ایران)
حمید روحانی 4 (استاد گروه گیاهپزشکی دانشکده کشاورزی دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران)

تاريخ الإرسال : 30 الثلاثاء , شوال, 1435 تاريخ التأكيد : 30 الثلاثاء , شوال, 1435 تاريخ الإصدار : 23 الخميس , رجب, 1435

الکلمات المفتاحية: کنترل بیولوژیک, چغندرقند, R. solani و P. oligandrum,

ملخص المقالة :

چغندرقند، از مهم ترین محصولات زراعی ایران است و بیماری های مرگ گیاهچه و پوسیدگی ریشه ناشی از R. solani از مهمترین علل کاهش عملکرد چغندرقند، می باشند. در این تحقیق جنبه های مختلف آنتاگونیستی 6 جدایه از  P. oligandrumدر کنترل R. solaniبا روش هایآزمایشگاهی شامل بررسی های میکروسکوپی نحوه ارتباط هیفی، رقابت غذایی، اثر متابولیت های گازی فرار،  اثر ترشحات مایع خارج سلولی در محیط کشت مصنوعی، خاک و وجود متابولیت های ضد قارچی مقاوم به حرارت در محیط کشت مصنوعی ارزیابی شدند. در بررسی های میکروسکوپی رفتار هیف  P. oligandrumبه شکل پیچیدن به دور هیف، چروکیدگی و جداشدن پروتوپلاست از دیواره سلولی، تشکیل اووسپور بر روی و داخل هیف R. solani دیده شد. در سایر آزمایش ها، جدایه های تربت جام و مشهد آنتاگونیست بیشترین قابلیت رقابت غذایی با R. solani را در محیط کشت داشتند و متابولیت های گازی فرار کلونی 36 ساعته جدایه تربت جام آنتاگونیست با41/56 درصد بیشترین تاثیر را در بازدارندگی از رشد میسلیوم R. solani داشت. بررسی کارایی ترشحات مایع خارج سلولی P. oligandrum در ممانعت از رشد میسلیوم R. solani در محیط کشت نشان داد جدایه مشهد با31/71درصد بیشترین بازدارندگی از رشد R. solani و غلظت های30%،40% و50% ترشحات مایع خارج سلولی جدایه تربت جام بیشترین اثر بازدارندگی از رشد R. solani را در محیط کشت داشتند. در بررسی کارایی ترشحات مایع خارج سلولی P. oligandrum در ممانعت از رشد میسلیوم R. solani در خاک مشخص شد، تیماری که خاک مورد استفاده در آن تنها با اینوکولوم P. oligandrum آلوده شده بود با 09/32 درصد بیشترین تاثیر را در بازدارندگی از رشد میسلیوم R. solani داشت. همچنین جدایه تربت جام، با 36/71 درصد بیشترین بازدارندگی از رشد R. solani را در آزمون مقایسه توانایی تولید متابولیت های ضد قارچی مقاوم به حرارت در محیط کشت، را داشت.

المصادر:


  1. Abbasi A. 2000. Etiology of root and crown disease sugar beet fungi in Khorasan [M.Sc thesis]. [Mashad (Iran)]: Ferdowsi University.
    2.
  2. Abbasi Moghadam A, Falahati Rastegar M and Jafarpour B. 1998. Etiology of sugar beet crown and root rot in Khorasan province. Paper presented at: 13th Iranian Plant Protection Congress; 23–27 August; Isfahan, Iran.
    3.
  3. Baird RE, Bell DK, Sumner DR, Mullinix BG and Culbreath AK. 1993. Survival of Rhizoctonia solani AG4 in residual peanut shells in soil. Plant Disease 77: 973–975.
    4.
  4. Benhamou N, Rey P, Picard K and Tirilly Y. 1999. Ultra structural and cytochemical aspects of the interaction between the mycoparasite, Pythium oligandrum, and soil-borne pathogens. Phytopathology 89: 506–517.
    5.
  5. Benson DM and Baker R. 1974. Epidemiology of Rhizoctonia solani pre emergence damping-off of radish. Phytopathology 64: 1163–1168.
    6.
  6. Brozova J. 2002. Exploitation the mycoparasitic fungus pythium oligandrum in plant protection. Plant Protection Science 1: 29–35.
    7.
  7. Bugbee WM. 1982. Sugar beet disease research. Sugar Beet Research 12: 155–165.
    8.
  8. Deacon JW. 1976. Studies on Pythium oligandrum, an aggressive parasite of otherfungi. TransactionBritish Mycological Society 66: 383–391.
    9.
  9. Elad Y, Chet I and Katan J. 1980. Trichoderma harzianum: A biocontrol agent effective against Sclerotium rolfsii and Rhizoctonia solani. Phytopathology 70: 119–121.
    10.
  10. Foley MF and Deacon JW. 1986. Susceptibility of Pythium spp. and other fungi to antagonism by the mycoparasite Pythium oligandrum. Soil Biology and Biochemistry 8: 91–95.
    11.
  11. Goltappeh A, Pakdaman B and Rezaee-Danesh Y. 1999. Pest and disease of sugarbeet. Tehran: Tarbeet-e Modarres University Press.
    12.
  12. Gray FA and Gerick JS. 1998. Biology and management of sugar beet diseases in the Bighorn and Wind River Basin of Wyoming. College of agricultural. University of Wyoming.
    13.
  13. Hedjaroud Gh and Alizadeh A. 1971. Rhizoctonia solani Kuhn cause of sugarbeet root brown rot. Iranian Journal of Plant Pathology 6: 23–34. (In persian with english summary)
    14.
  14. Herr LJ. 1976. In field survival of Rhizoctonia solani in soil and in diseased sugarbeets. Canadian Journal Microbiology 22: 983–988.
    15.
  15. Howell CR and Stipanovic RD. 1995. Mechanisms in the biocontrol of R. solani-induced cotton seedling disease by Gliocladium virens: antibiosis. Phytopathology 85: 469–472.
    16.
  16. Jacobsen BJ, Bergman J and Eckhoff J. 1999. Control of Rhizoctonia crown and root rot of sugar beet with fungicides and antagonistic bacteria. Sugarbeet Research and Exension Report 29: 278–280.
    17.
  17. Kiewnick S and Jacobsen BJ. 2001. Antagonistic bacteria and fungicides for control of Rhizoctonia crown and root rot on sugar beet. Plant Disease 12: 30–37.
    18.
  18. Kuninaga S and Yokosawa R. 1984. DNA base sequence homology in Rhizoctonia solani Kuhn. Genetic relatedness within AG-6. Annual Phytopathology Society Japan 50: 346–351.
    19.
  19. Lutchmeah RS and Cooke RC. 1984. Aspects of antagonism by the mycoparasite Pythium oligandrum. TransactionBritish Mycological Society 83: 696–700.
    20.
  20. Martin FN and Hancock JG. 1987. The use of Pythium oligandrum for biological control of damping-off caused by P. ultimum. Phytopathology 77: 1013–1020.
    21.
  21. Martin FN. 1992. The genus Pythium. pp 39–49, In LL Singleton, JD Mihail and CM Rush (eds). Methods for Research on Soil Borne Phytopathogenic Fungi. St Paul, MN: American Phytopathological Society Press.
    22.
  22. McQuilken MP, Whipps JM and Cooke RC. 1990. Control of damping off in cress and sugar-beet by commercial seed-coating with P. oligandrum. Plant Pathology 39: 452–462.
    23.
  23. Momeni J, Falahati-Rastegar M and Jafarpour B. 2004. Evaluation of DNA polymorphism anastomosis group of Rhizoctonia solani in sugarbeet by using RAPD-pcr in Khorasan. Iranian Journal of Plant Pathology 4: 9–15.
    24.
  24. Olaya G and Abawi GS. 1994. Influence of inoculums type and moisture on development of Rhizoctonia solani on foliage of table beets. Plant Disease 78: 805–810.
    25.
  25. Onkar D and James B.1995. Basic plant pathology methods. London: Lewis publisher.
    26.
  26. Paulitz TC and Belanger R. 2001. Biological control in greenhouse systems. Annuual Review Phytopathology 39: 103–133.
    27.
  27. Plaats-Nitherink AJ. 1981. Monograph of the genus Pythium. Studies in Mycology 21: 1–242.
    28.
  28. Rahnama K and Cooke RC. 1998. Evaluation of mycoparasitism effect on oospore and sporangia of Pythium ultimum by Pythium olygandrum. Paper presented at: 13th Iranian Plant Protection Congress; 23–27 August; Karaj, Iran.
    29.
  29. Shahiri-Tabarestani M. 2000. Investigation on biological control of sugar beet damping-off disease by some isolates of Trichoderma harizanum, Glicladium sp. and some Bacillus species [M.Sc thesis]. [Mashad (Iran)] Ferdowsi University.
    30.
  30. Shahiri-Tabarestani M. Falahati-Rastegar M. Jafarpour B and Rohani M. 2005. Investigation on biological control of sugarbeet damping-off disease by some isolates of Trichoderma harizanum Rafai. Journal of sugarbeet 21: 57–75.
    31.
  31. Truter M. 2005. Etiology and alternative control of Potato rhizoctoniasis in South Africa [M.Sc. thesis]. [Pretoria] University of Pretoria.
    32.
  32. Vesely D and Koubova D. 1993. The effect of Pythium oligandrum on the health condition of winter wheat roots. Ochrana Rostlin 29: 193–202.
    33.
  33. Vesely D. 1977. Potential biological control of damping-off pathogens in emerging sugar beet by Pythium oligandrum Drechsler. Phytopathology 90: 113–115.
    34.
  34. Vesely R and Hejdanek S. 1984. Microbial relations of Pythium oligandrum and problems in the use of this organism for the biological control of damping off of sugar beet. Zentralblatt für Mikrobiologie 139: 257–262.
    35.
  35. Vilgalys R. 1988. Genetic Relatedness among anastomosis groups in Rhizoctonia as measured by DNA/DNA hybridization. Phytopathology 78: 698–702.
    36.
  36. Whipps JM, McQuilken MP and Budge SP. 1993. Use of fungal antagonist for biocontrol of damping-off and Sclerotinia disease. Pesticide Science 37: 307–319.
    37.

37.  Yokoyama K and Ogoshi A. 1986. Studies on hyphal anastomosis of Rhizoctonia solani. Observation of imperfect fusion by light and electron microscopy. Mycological Society 27: 399–413.

 

 

_||_

سند

Sanad is a platform for managing Azad University publications

الروابط

المراكز ذات الصلة

دعامة

الصفحات الرسمية

حقوق هذا الموقع الإلكتروني مملوكة لنظام SANAD Press Management. © 1442-1446

الصفحة الرئيسية| دخول| معلومات عنا| اتصل بنا|
[English] [فارسی] [en] [fa]