بررسی اثرات تزریق داروهای هوشبری وریدی پروپوفل، تیو پنتال سدیم، فنتانیل در زمان لانه گزینی بر میزان ناهنجاری ها در موش های صحرایی

اثرات  داروهای هوشبری  پروپوفل، تیو پنتال سدیم، فنتانیل در زمان لانه گزینی بر میزان ناهنجاری ها 

الموضوعات :

شیوا شجاعی فرد ¹ (گروه بیهوشی ، دانشگاه علوم پزشکی زنجان ، زنجان ، ایران)
محمد رضا جمشیدی ² (گروه بیهوشی ، دانشکده پزشکی ، دانشگاه علوم پزشکی زنجان، زنجان، ایران.)
الهام حسینی ³ (گروه زنان و زایمان، بیمارستان موسوی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی زنجان، زنجان، ایران)
سمیه عبدالهی ثابت ⁴ (گروه پزشکی اجتماعی، دانشکده پزشکی، مرکز تحقیقات عوامل اجتماعی سلامت، دانشگاه علوم پزشکی زنجان، زنجان، ایران)
مهدی رهنما ⁵ (دانشیار گروه زیست شناسی فیزیولوژی جانوری، دانشکده علوم پایه، واحدزنجان، دانشگاه آزاد اسلامی، زنجان. ایران)

تاريخ الإرسال : 09 الخميس , ربيع الثاني, 1444 تاريخ التأكيد : 18 الإثنين , شوال, 1444 تاريخ الإصدار : 05 الأحد , محرم, 1445

الکلمات المفتاحية: ناهنجاری, فنتانیل, : پروپوفول, تیوپنتال سدیم, کاشت جنین,

ملخص المقالة :

زمینه و هدف: بیهوشی برای فناوری کمک باروری بسیار مهم است تا حداقل اثرات نامطلوب بر روی تخمک فراهم کند. ایجاد نقص در رشد جنین یا ناهنجاری در پدیده رشد آن ، در بیشتر موارد منجر به شکست IVF می شود. تعداد ناهنجاری ها در موش های آزمایشگاهی RAT است.مواد و روش ها: از سه داروی بیهوشی پروپوفول، نستونال و فنتانیل برای بیهوشی به صورت تک و ترکیبی استفاده شد. گروه شم برای کنترل استرس تزریق با تزریق آب مقطر و گروه کنترل بدون دریافت دارو مورد مطالعه قرار گرفتند. در مرحله بعد شرایط باروری موش ها فراهم شد. اثربخشی داروها نسبتا مشابه دوزهای انتخابی است و پس از شمارش، عمل جراحی به صورت سزارین روی هر جنین انجام می شود و پس از جداسازی دقیق جفت از جنین، هر دو به دقت وزن و اندازه گیری و ثبت می شوند.نتایج: تفاوت در تعداد تولدها مشاهده نشد، اما وزن جفت و وزن جنین به عنوان شاخص تعیین کننده تأثیر داروها بر روی جنین مورد بررسی قرار گرفت که می تواند نمادی از ناهنجاری های جنینی باشد. نتایج نشان داد که داروهای استفاده شده تاثیری بر لقاح و میزان موفقیت آن نداشتند، اما بر رشد جنین موثر بودند و پروپوفول کمترین تاثیر را بر ناهنجاری داشت و تفاوت معنی‌داری در جفت و وزن جنین بین این گروه و گروه وجود داشت. وزن هنگام تولد موش ها بر اساس نوع دارو، بیشترین وزن هنگام تولد مربوط به داروی نستونال (TP) و کمترین وزن هنگام تولد مربوط به داروی فنتانیل (PH) بود. بر اساس نوع دارو، وزن تولد زنده موش‌ها بیشترین وزن موش‌های زنده مربوط به داروی نستونال (TP) و کمترین آن مربوط به داروی فنتانیل (PH) بود.نتیجه گیری:بررسی داروهای بیهوشی برای یافتن ایمن ترین و بهترین دارو از اهمیت بالینی و تحقیقاتی بالایی برخوردار است. مطالعه ناهنجاری های کروموزومی یکی از برنامه های اصلی مطالعات آتی برای تجزیه و تحلیل ناهنجاری های جنینی است.

المصادر:

1. Haikin Herzberger E, Levy O, Sun B, Miller N, Rahav R, Dana E, et al. General anesthesia with propofol during oocyte retrieval and in vitro fertilization outcomes: retrospective cohort study. Scientific Reports. 2023;13(1):8021.
2. Sharma R, Qureshi N, Mogra S, Panwar K. Lead Induced Infertility in Swiss Mice and Role of Antioxidants. Universal Journal of Environmental Research & Technology. 2012;2(2).
3. NRCU R. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. National Academies Press (US) Washington (DC); 1996.
4. Hilderbrand DC, Der R, Griffin WT, Fahim MS. Effect of lead acetate on reproduction. American journal of obstetrics and gynecology. 1973;115(8):1058-65.
5. Dhir V, Dhand P. Toxicological approach in chronic exposure to lead on reproductive functions in female rats (Rattus norvegicus). Toxicology international. 2010;17(1):1.
6. Pathak S, Lees C. Ultrasound structural fetal anomaly screening: an update. Archives of Disease in Childhood-Fetal and Neonatal Edition. 2009;94(5):F384-F90.
7. Pierce S. SVH AEC SOP. 26. Euthanasia of Mice and Rats Melbourne, Australia: Animal Ethics Committee of St Vincent’s Hospital. 2006.
8. Franks PA, Laughlin NK, Dierschke DJ, Bowman RE, Meller PA. Effects of lead on luteal function in rhesus monkeys. Biology of reproduction. 1989 Dec 1;41(6):1055-62.
9. Dumitrescu E, Chiurciu V, Muselin F, Popescu R, Brezovan D, CRISTINA RT. Effects of long-term exposure of female rats to low levels of lead: ovary and uterus histological architecture changes. Turkish Journal of Biology. 2015;39(2):284-9.
10. Piasek M, Kostial K. Reversibility of the effects of lead on the reproductive performance of female rats. Reproductive Toxicology. 1991 Jan 1;5(1):45-51.
11.Lee K-s, Khoshnood B, Chen L, Wall SN, Cromie WJ, Mittendorf RL. Infant mortality from congenital malformations in the United States, 1970–1997. Obstetrics & Gynecology. 2001;98(4):620-7.
12. Şincai M. Tehnici de citohistologie normalã si patologicã: Mirton; 2000.
13. Qureshi N, Sharma R, Mogra S, Panwar K. Amelioration of lead induced alterations in ovary of Swiss mice, by antioxidant vitamins. J Herbal Med Toxicol. 2010;4(1):89-95.
14. Menache A. The European Citizens’ Stop Vivisection Initiative and the Revision of Directive 2010/63/EU. Alternatives to Laboratory Animals. 2016;44(4):383-90.
15. Borja-Aburto VH, Hertz-Picciotto I, Lopez MR, Farias P, Rios C, Blanco J. Blood lead levels measured prospectively and risk of spontaneous abortion. American Journal of Epidemiology. 1999;150(6):590-7.
16. Tchernitchin AN, Gaete L, Bustamante R, Báez A. Effect of prenatal exposure to lead on estrogen action in the prepubertal rat uterus. International Scholarly Research Notices. 2011;2011.
17. Taupeau C, Poupon J, Nomé F, Lefèvre B. Lead accumulation in the mouse ovary after treatment-induced follicular atresia. Reproductive toxicology. 2001;15(4):385-91.
18. Boyd PA, DeVigan C, Khoshnood B, Loane M, Garne E, Dolk H, et al. Survey of prenatal screening policies in Europe for structural malformations and chromosome anomalies, and their impact on detection and termination rates for neural tube defects and
Down’s syndrome. BJOG: An International Journal of Obstetrics & Gynaecology. 2008;115(6):689-96.
19. Jiwani SS, Amouzou-Aguirre A, Carvajal L, Chou D, Keita Y, Moran AC, et al. Timing and number of antenatal care contacts in low and middle-income countries: Analysis in the Countdown to 2030 priority countries. Journal of global health. 2020;10(1).
20. Pan M, Huang LY, Zhen L, Li DZ. A cost-effectiveness analysis comparing two different strategies in advanced maternal age: Combined first-trimester screening and maternal blood cell-free DNA testing. Taiwanese Journal of Obstetrics and Gynecology. 2018 Aug 1;57(4):536-40.
21. Junaid M, Chowdhuri D, Saxena RNRSD. Lead-induced changes in ovarian follicular development and maturation in mice. Journal of Toxicology and Environmental Health Part A. 1997;50(1):31-40.
22. Winder C. Lead, reproduction and development. Neurotoxicology. 1993;14(2-3):303-17.
23. Ahmed N. Correlation of blood lead levels with atresia of ovarian follicles of albino mice. Ann Pak Inst Med Sci. 2008;4(4):188-92.
24. Azmude A, Agha'amou S, Yousefshahi F, Berjis K, Mirmohammad'khani M, Sadaat'ahmadi F, Ghods K, Dabbagh A. Pregnancy outcome using general anesthesia versus spinal anesthesia for in vitro fertilization. Anesthesiology and Pain Medicine. 2013 Sep;3(2):239.
25. Gonen O, Shulman A, Ghetler Y, Shapiro A, Judeiken R, Beyth Y, Ben-Nun I. The impact of different types of anesthesia on in vitro fertilization-embryo transfer treatment outcome. Journal of assisted reproduction and genetics. 1995 Nov;12:678-82.
26. Reshan RG, Ameen BG, Hassan AA. Effect of TIVA with Propofol Versus Inhalational Anasthesia Plus Ketamine on Fertilization and Clinical Pregnancy Rate in ICSI. International Journal of Psychosocial Rehabilitation. 2020 Apr 1;24(05).